NMDA受体中钙通透性与镁阻滞的分子机制

时间:2026年5月6日
来源:Nature Neuroscience

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赫布神经可塑性被认为是学习和记忆的细胞基础,其发生依赖于突触前神经递质释放与突触后去极化时Ca2+内流的巧合检测。这一过程在分子水平上由N-甲基-D-天冬氨酸型谷氨酸受体(NMDAR)介导,该受体结合谷氨酸和甘氨酸,并在膜去极化解除Mg2+通道阻滞时促进Ca2

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赫布神经可塑性被认为是学习和记忆的细胞基础,其发生依赖于突触前神经递质释放与突触后去极化时Ca2+内流的巧合检测。这一过程在分子水平上由N-甲基-D-天冬氨酸型谷氨酸受体(NMDAR)介导,该受体结合谷氨酸和甘氨酸,并在膜去极化解除Mg2+通道阻滞时促进Ca2+内流。然而,NMDAR中Ca2+通透性和Mg2+阻滞的结构机制尚未完全阐明。研究人员利用单颗粒冷冻电子显微镜(cryo-EM)证明,Ca2+通过阳离子选择性过滤器的狭窄收缩区涉及部分脱水,这由数个Ca2+结合位点证实。相比之下,Mg2+通过水网络结合在选择性过滤器外部并保持水合状态,从而充当通道阻滞剂。此外,选择性过滤器周围的脂质网络以电压依赖性方式影响Mg2+结合的稳定性。该研究详述了启动神经可塑性的跨膜化学机制。
研究人员针对NMDAR介导赫布可塑性中Ca2+通透与Mg2+电压依赖性阻滞的结构机制不明这一长期存在的问题,选取具有高Ca2+通透性和Mg2+敏感性的GluN1a-2B NMDAR亚型,利用单颗粒冷冻电子显微镜(cryo-EM)结合局部精修技术,解析了激动剂结合状态下Ca2+和Mg2+存在时的高分辨率结构,并结合分子动力学(MD)模拟与双电极电压钳(TEVC)电生理学实验,揭示了离子识别与阻滞的分子基础。该研究成果发表于《Nature Neuroscience》。
关键技术方法包括:利用冷冻电镜解析GluN1a-2B NMDAR在结合激动剂(甘氨酸和谷氨酸)及不同阳离子(CaCl2、MgCl2或无二价阳离子加EDTA)条件下的三维结构,通过局部精修获得跨膜域(TMD)2.3Å至3.0Å的分辨率;采用分子动力学模拟计算不同膜电位下Mg2+与天冬酰胺笼(Asn-cage)残基的距离分布;利用双电极电压钳技术记录爪蟾卵母细胞表达的野生型及突变体NMDAR的电流-电压关系,分析Mg2+阻滞的浓度效应与电压依赖性参数(IC50、V50、δ)。
研究结果如下:
Cryo-EM captures several calcium sites within the NMDAR channel pore
研究人员通过冷冻电镜在阳离子选择性过滤器内捕获了至少五个Ca2+结合位点(State-1至State-5)。这些位点位于由GluN1a Asn616和GluN2B Asn615-616构成的“天冬酰胺笼”(Asn-cage)内。结构显示Ca2+在穿过狭窄收缩区时需与Asn侧链直接或间接相互作用,经历部分脱水过程,从而揭示了Ca2+的渗透路径。在无二价阳离子(EDTA处理)的样本中未观察到相应密度,证实了这些位点对应Ca2+离子。
Two magnesium binding sites around the selectivity filter
与Ca2+不同,研究人员仅在选择性过滤器外观察到两个明确的Mg2+结合位点:位于Asn-cage上方的“上位”点和下方的“下位点”。上位点的Mg2+保持水合并通过水分子网络与GluN1a Asn616和GluN2B Asn615间接作用,无法进入并穿越狭窄的Asn-cage。下位点的Mg2+则位于细胞内入口处。由于Mg2+脱水所需能量远高于Ca2+,导致其无法像Ca2+那样部分脱水并通过孔道,从而表现为通道阻滞剂。Asn残基的突变显著改变了Mg2+阻滞的效力和电压依赖性。
A lipid network surrounds the NMDAR pore and affects voltage-dependent Mg2+block
研究人员发现两个磷脂(PL1和PL2)对称地结合在GluN1a-GluN2B界面,紧邻Asn-cage的“背部”。分子动力学模拟表明,在存在脂质的情况下,Mg2+在静息电位(-70 mV)下比在去极化电位(0 mV)下更接近Asn-cage,显示出电压敏感性;而在无脂质模型中这种电压依赖性消失。这表明紧密结合的脂质参与了电压敏感的Mg2+阻滞调控。
Mutations on lipid-binding residues affect Mg2+block
研究人员对脂质结合口袋周围残基进行定点突变,电生理学分析显示这些突变显著改变了Mg2+阻滞的IC50值和电压依赖性(V50和δ值)。根据突变影响的电压特异性,可分为影响所有测试电压、仅影响-60/-40 mV以及仅影响-20 mV的组别。荧光尺寸排阻色谱(FSEC)证实突变体仍保持四聚体结构,排除了因蛋白折叠错误导致的功能改变,表明脂质微环境通过局部结构变化调节Mg2+阻滞。
讨论部分总结指出,本研究提出的分子机制是:NMDAR的Asn-cage能够通过直接与Ca2+配位并使其部分脱水从而促进Ca2+通透性;而Asn-cage无法使Mg2+脱水(此过程能耗远高于Ca2+),导致Mg2+以水合形式结合在选择性过滤器外部,形成电压依赖性的通道阻滞。研究鉴定出的两个Mg2+结合位点(上位点和下位点)分别对应胞外和胞内的阻滞位点。此外,研究发现脂质网络(PL1和PL2)是NMDAR蛋白结构的组成部分,能够响应电场变化诱导Asn-cage残基的局部构象改变,进而调节Mg2+的结合与电压敏感性。最后,研究比较了NMDAR与AMPA受体(AMPAR)在QNR位点孔径上的差异,指出NMDAR的狭窄孔径强制Ca2+脱水,而AMPAR孔径较大可能允许Ca2+不脱水通过,揭示了两者钙渗透机制的根本不同。

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