白绒豆（Mucuna pruriens L.）种子的生物碱含量、抗炎活性及植物化学成分谱

**摘要**

绒毛豆（Mucuna pruriens L.）是一种在传统医学中广泛认可的豆科植物，由于其丰富的药理潜力，尤其是在其富含生物碱的种子成分方面，近年来引起了越来越多的科学关注。本研究旨在探讨绒毛豆种子甲醇提取物及其溶剂分离组分（n-己烷、乙酸乙酯、n-丁醇和水）中的总生物碱含量、植物化学成分和抗炎活性。定量分析显示，水相和n-己烷组分中的生物碱含量显著高于其他提取物。气相色谱-质谱（GC-MS）分析鉴定出36种生物活性化合物，涵盖了烷烃、酯类、酸类、硅烷和酰胺等多种化学类别。甲醇提取物中的主要化合物包括9,12-十八二烯酸（Z,Z）-甲酯（44.87%）、十六酸甲酯（27.33%）和顺-13-十八二烯酸甲酯（10.16%）。值得注意的是，乙酸乙酯和水相组分表现出强烈的抗炎作用，其IC50值分别为69.32 μg/mL和83.06 μg/mL。其中含有已知的抗癌和抗炎特性的 isoquinoline 生物碱 decarine，进一步凸显了该植物的药理价值。这些发现突显了白绒毛豆种子的治疗潜力，并为未来的药物应用提供了生化基础。

**1. 引言**

全球对天然和传统医学兴趣的重新兴起导致了草药产品和膳食补充剂使用的显著增加。这一趋势可能归因于生物技术的进步、生活水平的提高以及消费者对合成药物的安全性和副作用日益关注[1]。在这一背景下，Mucuna pruriens（俗称绒毛豆、cowitch、cowhage 或 alkushi）重新受到了关注。这种原产于中国南部、印度次大陆、澳大利亚和越南的快速生长的豆科植物，在热带地区广泛种植。它能在pH值5–8的酸性土壤和19°C至27°C的温度范围内茁壮成长[3]。除了其农业多样性外，Mucuna pruriens 传统上还被用作食物和饲料。其种子可作为蔬菜食用或加工成面粉[4]，其嫩叶可用作牲畜饲料[5]。从植物化学角度来看，Mucuna pruriens 是次生代谢物的丰富来源，尤其是生物碱，这类含氮化合物以其多样的药理作用而闻名。生物碱约占植物源次生代谢物的20%[6]，可能包括中性或弱酸性的化合物[7]。这些低分子量化合物具有广泛的结构变异，并以其生物活性而著称，包括抗疟疾[8]、抗癌[9]和神经保护作用（如促进脑血流量和预防中风[10]。早期对Mucuna pruriens 种子的研究已鉴定出多种生物碱，暂命名为 prurienine、prurieninine、prurienidine 以及 P、Q、R、S 和 X 基等，同时还含有大量的 L-DOPA、脂肪酸和氨基酸[11–13]。全面的研究表明，Mucuna pruriens 的几乎所有部分都具有治疗特性，包括抗糖尿病、催欲、抗癌、抗癫痫、抗炎和抗菌作用[5]。炎症作为对感染或损伤的病理生理反应，是许多传统疗法的关键靶点。多项研究证实了 Mucuna pruriens 种子粉的抗炎活性，并且随着剂量的增加，其效果更加强烈[14]。民族植物学记录进一步支持了其在治疗发热、水肿和象皮病等方面的应用，如当地社区所实践的[15]。例如，在印度尼西亚的 Tanjung Modang、Tanah Datar 和 West Sumatra 等地区，人们会将 Mucuna pruriens 的叶子捣碎后外敷在发炎区域[16]。除了抗炎潜力外，Mucuna pruriens 在体外还表现出抗氧化活性[2]，被认为是抗氧化剂和抗菌剂的潜在天然来源[17]。其种子传统上用于治疗细菌感染、伤口和象皮病等寄生虫病，含有具有抗炎特性的生物活性三萜类化合物，如 α-amyrin 和 β-amyrin，这一点通过气相色谱-质谱（GC-MS）分析得到了证实[18]。Mucuna pruriens 的营养价值同样值得注意，其能量水平可与谷物媲美[19]，先前的植物化学研究表明其中含有碳水化合物、蛋白质、氨基酸、黄酮类、皂苷、植物甾醇和酚类[20]。矿物分析显示，Mucuna pruriens var. utilis 的种子含有比几种常见豆类（如Phaseolus vulgaris、Cicer arietinum 和 Pisum sativum）更高的钠、钾、钙、磷、镁和锰含量[21]。从植物学角度来看，Mucuna pruriens var. utilis 有多个栽培品种，一般分为黑籽和白籽类型。尽管关于黑籽的研究较多，尤其是在其抗帕金森病和抗炎作用方面，但白籽变种的探索相对较少。鉴于不同品种在植物化学成分和生物活性方面的潜在差异，研究白绒毛豆种子的药用特性具有重要意义。因此，本研究的目的是探讨白绒毛豆种子（Mucuna pruriens var. utilis）甲醇提取物（MEs）及其溶剂组分（n-己烷、乙酸乙酯、n-丁醇和水）的总生物碱含量、抗炎活性和化学组成。本研究旨在识别具有抗炎潜力的活性成分，并评估它们在不同溶剂组分中的分布情况。化学成分通过 GC-MS 进行分析，而体外抗炎效果则通过蛋白质变性抑制实验进行评估。这些结果将有助于了解这一未充分利用品种的治疗潜力，并为植物基药物和功能性食品的应用开发提供依据（图1）。

**2. 材料与方法**

2.1. 植物材料与样品制备

白绒毛豆（M. pruriens）种子来源于 Ha 等人的先前研究[2]。种子最初从越南 Vinh Long 省 Ben Tre 的种植植株中收集（坐标为 10.23487°N, 106.37110°E）。植物标本由越南国立林业大学的植物分类学家进行了鉴定。提取过程按照 Ha 等人报告的方案进行[2]（见图2）。随后，种子在室温（约 28°C–35°C）下自然风干5–7天，直至达到恒定重量后进行进一步处理。干燥后的种子用实验室研磨机研磨成细粉。约200克种子粉末用甲醇（1:10 w/v）在室温（25 ± 2°C）下浸渍72小时，并间歇搅拌。提取物通过 Whatman No. 1 过滤纸过滤，并在旋蒸器中减压浓缩至40°C。原始甲醇提取物依次用极性逐渐增加的溶剂进行液-液分离。原甲醇提取物溶解在100毫升蒸馏水中，然后用200毫升己烷提取得到 n-己烷组分；剩余的水相提取物分别用200毫升乙酸乙酯和200毫升n-丁醇提取得到乙酸乙酯和n-丁醇组分。所有提取后的组分及剩余的水溶液分别过滤并浓缩，得到n-己烷、乙酸乙酯、n-丁醇和水相组分（FH、FE、FB 和 FA）。所有组分在减压条件下浓缩以去除溶剂，并储存以供进一步的植物化学和生物学分析。粗提取物的产量基于植物材料的初始干重计算，而后续组分的产量则表示为液-液分离后所得粗提取物的百分比。所有实验均于2023年9月至2024年4月在越南 Ton Duc Thang 大学的应用科学学院进行（图2）。

2.2. 总生物碱的测定

总生物碱含量使用 Ajanal 等人描述的方法[22]进行测定。溶剂蒸发后，干燥残渣溶于2 N HCl并过滤。将1毫升滤液转移到分离漏斗中，用10毫升氯仿清洗三次。然后使用0.1 N NaOH将水相的pH调至中性（pH 7.0）。接着加入5毫升0.04% (w/v) 的溴甲酚绿（BCG）溶液和5毫升磷酸盐缓冲液（pH 4.7），以促进生物碱-BCG 复合物的形成。混合物在室温（25 ± 2°C）下剧烈振荡5分钟，然后依次用1、2、3和4毫升氯仿提取。合并的氯仿相在容量瓶中定容至10毫升。标准溶液的浓度范围为1.25至5 μg/mL。在470 nm处测量标准溶液、样品溶液和空白溶液的吸光度，得出 y = 0.0833x + 0.0078（R2 = 0.9971）的方程式，以氯仿作为空白对照。结果以每克干重的阿托品当量（mg AE g−1）表示。

2.3. GC-MS 分析

甲醇提取物及每种溶剂组分的化学组成通过 GC-MS 确定，方法遵循 Velmurugan 和 Anand 的步骤[23]。使用 DB-5 MS 毛细管柱（30 m × 0.25 mm 内径，0.25-μm 薄膜厚度）进行测试。载体气体为氦气，流速为1.0 mL/min。每个样品注入1-μL体积。烤箱温度从70°C逐步升高至260°C，升温速率为5°C/min。质谱数据在50–650 m/z范围内记录。化合物鉴定通过与 Wiley Spectral Library 的比对完成。

2.4. 抗炎活性的评估

甲醇提取物及其组分的体外抗炎活性基于蛋白质变性的抑制作用进行评估，方法依据 Elisha 等人的描述[24]。将100-μL提取物（浓度为9.77–1250 μg/mL）与100 μL 在磷酸盐缓冲液（0.2 M, pH 6.3）中制备的5% 牛血清白蛋白（BSA）混合。在37°C下孵育20分钟后，混合物加热至70°C持续10分钟。随后冷却样品，并在660 nm处使用UV-Vis分光光度计（Jenway 6705 UV-Vis分光光度计，英国）测量吸光度。阿司匹林用作参考标准。蛋白质变性抑制百分比的计算公式为：%inhibition = 100×(Abs sample − blank/control − 1)。

2.5. 数据分析

所有实验重复三次，数据以平均值 ± 标准误差（SE）表示。统计分析使用 CTAB 软件进行单因素方差分析（ANOVA）。组间显著差异使用 Duncan 多范围检验在显著性水平 p < 0.05 下进行评估。

**3. 结果**

3.1. 提取产量和总生物碱含量

甲醇提取物及其组分中的提取产量和总生物碱含量见表1。表1显示了白绒毛豆提取物及其溶剂组分中的提取产量和总生物碱含量。

| 组分 | 提取产量（%） | 总生物碱含量（mg阿托品/g提取物） |
|------------|---------------|------------------------|
| ME | 9.43 | 0.1865 ± 0.0250 |
| FH | 0.20 | 0.7107 ± 0.0523 |
| FE | 0.03 | 0.0104 ± 0.0069 |
| FB | 0.11 | 0.5146 ± 0.0661 |
| FA | 0.12 | 0.8147 ± 0.0250 |

注：ME 为甲醇提取物；FH 为n-己烷组分；FE 为乙酸乙酯组分；FB 为n-丁醇组分；FA 为水相组分。数值表示为平均值 ± 标准差。同一列中带有相同字母的均值无显著差异（p< 0.05）。结果表明，甲醇提取物的提取产量最高（9.43%，w/w），表明其在从植物材料中提取多种植物成分方面具有高效性。通过分离得到的溶剂组分的产量显著较低，范围为0.03%至0.20%。其中 FH 的产量最高（0.20%），其次是 FA（0.12%）和 FB（0.11%），FE 的产量最低（0.03%）。尽管产量较低，但在各组分间总生物碱含量存在显著差异。FA 和 FH 的生物碱含量显著高于其他组分，分别为0.8147 ± 0.0250 mg/g提取物和0.7107 ± 0.0523 mg/g提取物（p < 0.05）。ME、FB和FE的生物碱浓度分别为0.1865 ± 0.0250 mg阿托品/g提取物、0.5146 ± 0.0661 mg和0.0104 ± 0.0069 mg。这些结果表明，尽管粗提物代表了所有可提取的物质，但溶剂分配会根据化合物的极性进行分离，导致某些生物碱在特定组分中富集。因此，在评估其分布时，应同时考虑提取 yield 和生物碱浓度。

3.2. GC–MS 化学成分分析

GC–MS 分析共鉴定出36种化合物，这些化合物被分类为不同的化学类别，包括烷烃、酯类、酸类、胺类、酰胺类、醚类、硅氧烷类、硅烷类、醇类和酚类（表2、图3和图4）。具体来说，ME中含有10种化合物，其中酯类占主导地位。三种主要成分是9,12-十八二烯酸（Z,Z）-甲基酯（44.87%）、十六烷酸甲酯（27.33%）和顺-13-十八烯酸甲酯（10.16%）（表2、图5）。FE和FA中分别含有8种和13种化合物。值得注意的是，烷烃是FA中的主要化学类别，而酯类在FE和ME中更为突出。FH中含有4种化合物，包括脂肪酸酯类（如顺-13-十八烯酸甲酯），而FB中只含有一种化合物——(hexacosane）。通过GC–MS鉴定了白绒毛豆种子甲醇提取物及其组分的化学成分。

3.3. 抗炎活性

使用蛋白质变性抑制试验评估了ME及其溶剂组分的抗炎潜力。所有样本均表现出剂量依赖性的抑制作用（表3）。在100 μg/mL浓度下，FA的抑制效果最高（61.24 ± 0.33%），超过了阳性对照阿司匹林（55.37 ± 0.05%）的抑制效果。FE也显示出强烈的抑制作用（59.61 ± 0.33%）。这些结果与IC50值一致，FE和FA的IC50值分别为69.32 μg/mL和83.06 μg/mL，均优于阿司匹林（IC50 = 88.93 μg/mL）。ME、FH和FB的IC50值分别为104.00 μg/mL、98.41 μg/mL和195.30 μg/mL，表明它们的抗炎活性较低。

4. 讨论

总生物碱含量的测定显示，ME、FH、FE和FB中都含有可测量的生物碱，其中FA的生物碱浓度最高（0.8147 ± 0.0250 mg/g），其次是FH（0.7107 ± 0.0523 mg/g）（表1）。在本研究中，FA和FH表现出相对较高的生物碱浓度，表明某些生物碱化合物优先分配到这些溶剂中。然而，就提取 yield 而言，ME或FB可能从植物材料中提供更多的总生物碱。这一发现与溶剂极性对生物碱溶解度的影响一致，表明极性和非极性环境都能增强各类生物碱的提取。因此，综合评估提取 yield 和生物碱含量可以更真实地评估生物碱的分布，并有助于选择进一步药理学研究的组分。本研究中鉴定出的生物碱含量与之前报道的M. pruriens的生物碱含量相符，根据提取条件，总生物碱含量通常在0.5至1.2 mg/g之间[25, 26]。本研究发现了白绒毛豆种子不同溶剂组分之间生物碱含量和生物活性成分的显著差异。生物碱广泛被认为具有抗炎作用，可通过调节关键途径（如抑制一氧化氮（NO）的产生、抑制促炎细胞因子（如TNF-α和IL-6）以及调节环氧化酶（COX）酶）来实现[26]。先前的研究证明，M. pruriens中的生物碱具有抗增殖、抗真菌、抗病毒、抗癌和抗菌活性[27, 28]。总体而言，这些发现突出了特定组分的药理潜力，特别是FA和FE，并与之前记录的M. pruriens种子的生物特性一致。FA中高生物碱浓度可以通过许多生物碱的化学组成来解释，这些生物碱通常是含氮碱基，通常以质子化或盐的形式存在，使得它们更易溶于极性溶剂（如水）[29]。FH中的相对较高值可能表明存在脂溶性生物碱衍生物或其他非极性氮化合物，这些化合物可以分配到非极性溶剂中[30]。这可能解释了为什么FH（0.7107 mg/g）的生物碱含量相对较高，尽管略低于FA。组分之间生物碱的分布可能受到提取顺序和溶剂分配方法的影响[31]。在顺序提取过程中，中等极性溶剂可以选择性地浓缩某些生物碱亚类，从而导致不同组分之间的总生物碱含量存在差异[32]。先前的研究表明，甲醇和水提取物始终能产生比非极性组分更高的生物碱浓度，这归因于它们对生物活性化学物质的优异溶解能力[33]。在M. pruriens种子中也观察到了类似的溶剂依赖性提取行为，极性溶剂（如甲醇或水溶液）可以提取大量的生物碱和L-DOPA[34]。本研究中FA和FH中相对较高的生物碱含量表明这些组分可能是未来药理学研究的理想候选对象。这一结果与豆科植物的已知化学多样性一致，生物碱的积累受到物种、品种遗传差异[35]、环境条件[36]、发育阶段以及方法学差异（包括提取溶剂、分离程序和实验模型[37]的强烈影响。GC–MS分析进一步证实了种子提取物的化学多样性，共鉴定出5个组分中的36种化合物（表2、图3和图4）。ME中含有10种化合物，其中酯类是主要成分。其中，9,12-十八二烯酸（Z,Z）-甲基酯（44.87%）、十六烷酸甲酯（27.33%）和顺-13-十八烯酸甲酯（10.16%）是主要成分（图5）。然而，需要强调的是，在GC–MS分析之前并未有意进行衍生化处理。因此，FAMEs的存在可能是由于样品制备过程中发生的原位酯化或酯交换反应所致，特别是在使用甲醇作为提取溶剂时。因此在解释这些化合物时需要谨慎，因为它们可能不能准确代表植物的原始成分。先前的研究已经记录了这种现象，在分析甲醇提取物的GC–MS数据时必须予以考虑。甲醇是一种高度极性的亲质溶剂，可以有效提取从中等极性到极性的各种分子，如酯类、脂肪酸衍生物和其他含氧代谢物[38]。ME中酯类化合物数量较多，是因为它们的中等极性以及它们在甲醇中的良好溶解性。甲醇还可以分解植物基质，释放出这些化合物的结合或结合形式[26]。在豆科植物的植物化学分析中也记录了甲醇提取物中酯类化合物的类似富集现象[39]。此外，GC–MS分析表明FA包含多种化合物，包括烷烃和其他次要成分，这些成分可能通过协同或稳定作用发挥作用[40]。9,12-十八二烯酸（Z,Z）-甲基酯和十六烷酸甲酯的鉴定进一步支持了观察到的生物效应，因为这两种化合物都具有抗炎、抗氧化和杀线虫活性[3, 41, 42]。顺-13-十八烯酸甲酯的存在也很重要，因为油酸衍生物被认为可以通过抑制NF-κB激活和减少氧化应激来抑制炎症反应[43]。同样，十六烷酸（棕榈酸）甲酯也被认为具有膜稳定和抗炎特性[41]。这些化合物之前已在M. pruriens种子提取物中报道过，并且与多种生物活性相关，包括保肝、抗炎、镇痛、杀线虫和降胆固醇作用[44, 45]。有趣的是，hexacosane仅在中性FB中被检测到。尽管hexacosane是非极性物质，但其在FB中的检测可能归因于共提取和基质效应，即脂质成分增加了其在中等极性溶剂（如n-丁醇）中的溶解度[46]。此外，GC–MS检测灵敏度的差异和可能的共洗脱也可能导致其在FB中的缺失[47]。正如Sruthi和Jayabaskaran[48]所报告的，含有hexacosane的精油对革兰氏阳性细菌（如Bacillus cereus和Staphylococcus aureus）具有抗菌活性。先前对M. pruriens及相关豆科物种的GC–MS研究发现了脂肪酸、酯类、烃类和其他次要代谢物，它们的分布受到提取溶剂和分离方法的显著影响[49]。因此，本研究中发现的模式与已知的植物化学物质在不同极性溶剂中的行为一致。总体而言，不同组分中化合物性质的差异反映了溶剂极性、化合物结构以及提取条件之间的相互作用，这突显了在选择溶剂进行植物化学研究时的重要性。在M. pruriens中发现的生物活性化合物作为次生代谢物，在植物抵御病原体、食草动物和环境压力的防御机制中起着关键作用[50]。这些代谢物，如生物碱和脂质衍生物，可能表明了植物与其环境共同进化所影响的适应性特征[51, 52]。这些化合物不仅提高了植物对生态挑战的抵抗力，还可能在哺乳动物体内表现出药理作用。观察到的生物活性证明了次生代谢物作为具有进化意义的化学防御机制的生态功能[53]。一般来说，GC–MS分析结果表明，提取物主要由亲脂性成分组成，特别是脂肪酸衍生物。然而，在样品制备过程中需要注意可能形成的甲酯和假象。为了验证这些成分的身份和生物学功能，需要采用其他分析方法，包括LC–MS或化合物分离。抗炎活性的评估显示，所有组分都能以剂量依赖的方式抑制蛋白质变性（表3）。值得注意的是，FE和FA表现出强烈的抑制作用，其IC50值分别为69.32和83.06 μg/mL，超过了标准抗炎药物阿司匹林（IC50 = 88.93 μg/mL）的活性。FE中观察到的增强活性可能归因于decarine的存在（表2），这是一种已被证明具有抗炎和抗癌特性的异喹啉生物碱[53]。此外，生物碱相关化学物质的存在支持了该组分的药理潜力，因为许多来自M. pruriens的生物碱已被证明具有抗炎和抗氧化特性。具体而言，不同组分（FE和FA）的抗炎作用可能与它们独特的植物化学组成有关。FE通常富含半极性化合物，如黄酮类结构和特定生物碱，可能通过两种机制发挥抗炎作用：(i) 抑制MAPK通路[54]，从而减少AP-1的激活；(ii) 抑制促炎细胞因子的合成。多项研究表明，这一极性范围内的化学物质可以显著降低LPS刺激的巨噬细胞中的NO和细胞因子水平。相比之下，尽管FE的生物碱含量很低，但仍表现出显著的抗炎作用，表明非生物碱化学物质是主要贡献者。因此，FE的高活性可能归因于该溶剂组分中各种生物活性成分的协同作用。这些发现表明，抗炎作用可能主要由脂质衍生物而不是生物碱引起。FA表现出最强的抗炎活性和较高的生物碱含量，表明极性生物碱可能是抑制蛋白质变性的关键因素。这些化合物可能通过下调促炎基因表达和改变氧化应激相关通路来影响其作用，特别是通过激活Nrf2/HO-1轴，这已被证明可以减轻炎症信号传导[55]。已有大量文献记载生物碱通过稳定蛋白质和抑制促炎介质来发挥抗炎作用[56, 57]。总体而言，这些发现表明白色绒毛豆种子含有多种具有显著抗炎特性的生物活性化合物，尤其是在FE和FA中。具体来说，多项体外研究表明，M. pruriens提取物可以通过阻断重要的炎症介质（如iNOS、COX-2和NF-κB信号通路）来减少活化巨噬细胞中的炎症反应[58]。这些发现与当前研究中的抗炎活性一致。然而，与黑籽M. pruriens和其他种质的研究相比，生物活性和植物化学成分存在显著差异。先前的研究表明，不同种子的L-DOPA和次生代谢物含量存在很大差异，包括黑籽、白籽和斑驳籽，其含量因品种和来源而异[35]。这种差异可能是我们研究和先前报告之间抗炎作用强度差异的原因。根据Pathania等人的研究[4]，M. pruriens与其他豆科植物（如大豆和鹰嘴豆）具有相似的植物化学类别（如酚类、脂肪酸和黄酮类），但它以其非常高的L-DOPA含量和独特的生物碱谱而脱颖而出。不同溶剂组分中生物碱浓度的差异表明，溶剂极性在提取和分布含氮生物活性化合物方面起着关键作用。FA和FB中发现的显著高生物碱水平表明，极性溶剂更有效地从绒毛豆种子中提取亲水性生物碱。同时，GC–MS分析显示，提取物中含有多种生物活性成分，包括脂肪酸及其酯类，这些成分已被广泛证明具有抗炎和抗氧化特性。FE和FA中观察到的显著抗炎活性可能是由于这些提取物中各种植物化学物质的组合或协同作用。高生物碱含量和多样的植物化学组成增强了该物种的药用潜力，提示其在未来药物发现和营养保健品应用中的重要性。基于这些发现，我们提出了一个概念模型，即植物的抗炎作用是由影响相互连接的炎症网络的多种化合物类之间的协同作用促成的。这一框架为理解M. pruriens及其他药用植物作为一个整体生物活性系统提供了全面的假设。当前的研究结果表明M. pruriens在药物和营养保健品应用中的潜在转化价值。该植物丰富的生物活性成分，尤其是其生物碱，支持了其已记录的药理活性，包括抗炎作用，使其成为治疗应用的有希望的候选者。从营养保健品的角度来看，M. pruriens可以作为食品或膳食补充剂，帮助预防疾病并提供营养支持。此外，作为一种固氮豆科植物，它还能提高土壤肥力，促进可持续农业实践，从而支持环境负责的农业系统。这些方面突显了其对全球健康、食品安全和可持续发展的重大意义。

5. 结论
本研究显示，白色绒毛豆种子的FA和FH含有最高的生物碱含量，而FE和FA在体外显示出更强的抗炎活性，其IC50值甚至超过了阳性对照。通过GC–MS分析，鉴定出了9,12-十八二烯酸（Z,Z）-甲酯、十六酸甲酯和decarine等生物活性化合物，支持了观察到的药理作用。这些发现突显了白色绒毛豆的重要药用潜力，尽管它是一种研究较少的品种。通过鉴定与抗炎作用相关的特定组分和化合物，这项研究为未来的药物开发提供了有价值的基础。尽管具有潜在的抗炎作用，但也存在一些不足。分馏方法缺乏选择性，因此效果可能是由复杂的成分相互作用引起的。体外实验不能充分代表体内情况，尤其是药代动力学和系统反应。未来的研究应侧重于基于生物活性的活性化合物分离、使用LC–MS/MS和NMR进行结构阐明，以及评估其作用机制和临床效果。本研究结果对植物药学和基于天然产物的治疗学的发展具有重要意义。

作者贡献
Pham Thi Thu Ha：监督、写作、审阅和编辑
Tran Thuy Loi：方法学
Doan Thien Thanh：形式分析
Phung Thi Tuyen：软件
Truong Ngoc Minh：写作、审阅和编辑
Nguyen Thanh Liem：写作、审阅和编辑

资金
本手稿未接受任何资助。

披露
所有作者均已阅读并同意发表的手稿版本。

利益冲突
作者声明没有利益冲突。

数据可用性声明
支持本研究发现的数据可根据合理要求向通讯作者索取。