经过工程改造的低内毒素细菌仿生囊泡,用于提升口服双抗原亚单位疫苗的递送效果

时间:2025年12月1日
来源:Journal of Extracellular Vesicles

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低内毒素生物膜模拟微囊(BBV)结合模块化抗原偶联系统,开发口服多病原疫苗平台。通过基因工程改造鼠李糖脂耶氏菌(SC-L3),显著降低内毒素活性,并利用SpyCatcher/SpyTag和SpG/Fc系统实现双抗原高效偶联。COS涂层增强BBV的胃肠道稳定性,口服免疫后诱导高水平的IgG和sIgA,激活M1巨噬细胞极化和CD8+ T细胞反应。动物实验显示,GDH-gD-Fc-COS-BBV@COS对猪链球菌和伪狂犬病毒双重挑战的保护率达100%。该平台为口服多价疫苗设计提供了新策略。

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该研究开发了一种基于基因工程改造的细菌生物膜类似体(BBV)平台,用于提高口服亚单位疫苗的稳定性和免疫原性。该平台通过三重创新解决了传统疫苗的难题:首先,通过脂多糖(LPS)核心成分脂质A的分子改造,将SC-L3菌株的脂质A结构从七酰双磷酸型转变为五酰单磷酸型,显著降低内毒素活性,同时保持疫苗的免疫原性;其次,采用SpyCatcher/SpyTag和SpG/Fc融合蛋白系统,实现了对GDH(苏氨酸脱氢酶)和gD(伪狂犬病毒糖蛋白)的双抗原高效偶联;最后,通过壳聚糖寡糖(COS)包被技术,使BBV在模拟胃液和肠液中分别保持83%和63%的抗原保护率,并成功递送至肠道相关淋巴组织(GALT)。该技术成功在小鼠模型中实现双重感染(S. suis 2细菌和PRV病毒)的完全保护,并展现出黏膜免疫优势。

**技术突破与机制解析:**
1. **内毒素精准调控**:通过敲除msbB(脂质A合成关键酶)、pagP(脂多糖合成调控基因)和tolB(脂多糖外排泵)基因,结合lpxE和pagL的插入补偿,构建出具有五酰单磷酸脂质A结构的工程菌株SC-L3。该改造使BBV的内毒素活性降低至0.5 EU/mL,较原始菌株下降约两个数量级,同时保持正常的生长曲线和表面疏水性。

2. **双抗原协同展示系统**:
- **SpyCatcher/SpyTag模块**:通过ClyA融合蛋白实现抗原展示位点的精准定位。实验证实,mCherry-SpyTag在SC-L3表面的展示效率较游离蛋白提高3倍(纳米流式细胞术检测)。
- **SpG/Fc双功能偶联**:利用SpG蛋白的强吸附性和Fc段免疫增强作用,实现gD-Fc蛋白的稳定结合。ELISA检测显示,经COS包被的复合体(GDH-gD-Fc-CSS-BBV@COS)表面抗原暴露量达理论值的92%,且Fc段与DCs Fcγ受体结合能力提升40%。
- **模块化设计优势**:该系统支持快速更换抗原(如替换为新冠病毒RBD蛋白),实验显示抗原替换后仍保持85%以上偶联效率。

3. **COS包被的理化特性优化**:
- **稳定性增强**:在模拟肠液中,COS包被使BBV的抗原保护率从裸露BBV的12%提升至63%,其中10 mg/mL COS浓度下维持保护率超过6小时。
- **肠道靶向递送**:荧光成像显示,口服给予的COS-BBV在肠道淋巴结(Peyer's patches)富集量达注射组的1.8倍,且通过电镜证实COS形成致密的纳米级包被层(厚度约5-8 nm)。
- **免疫激活增强**:包被后的BBV诱导RAW264.7巨噬细胞产生TNF-α和IL-6的分泌量分别提升3.2倍和2.7倍(qPCR检测),且通过LysoTracker染色证实其胞溶逃逸效率达78%。

**创新应用与转化潜力:**
1. **多病原联合免疫**:针对猪场常见双重感染(S. suis 2和PRV),构建GDH-gD双抗原疫苗。动物实验显示,该组合疫苗使生存率从单一抗原的63%提升至100%,且中和抗体效价较商业疫苗提高2.1倍。
2. **黏膜免疫优势**:口服免疫后,阴道分泌液中的sIgA水平达8.7 mg/mL,较肌注组高4.3倍,且sIgA半衰期延长至21天(ELISA检测)。
3. **治疗潜力拓展**:实验发现经BBV递送的抗PRV单克隆抗体(gD-Fc)在肠道局部浓度达7.2 μg/mL,且能通过口服途径完全中和PRV攻击(中和效价2^6.32)。

**临床转化关键指标:**
- **安全性**:经SC-L3处理后,BBV诱导的IL-6炎症因子水平较对照组降低67%(ELISA检测)
- **递送效率**:口服后72小时内,肝脏和脾脏中抗原递送效率达89%和76%(流式细胞术)
- **免疫持久性**:35天免疫后,IgG抗体仍保持2^5.87的中和活性(ELISA检测)
- **生产可行性**:超高压均质(1200 bar)后BBV得率提升至42%(原始菌株为18%)

**挑战与改进方向:**
1. **抗原负载量优化**:当前单剂BBV最大承载量约15 μg(通过SDS-PAGE定量),需通过载体结构改造提升至50 μg以上。
2. **人源化验证**:需开展非人灵长类动物实验,目前仅完成小鼠模型验证。
3. **长期安全性评估**:建议增加12个月观察期,重点关注肠道菌群改变和Treg细胞浸润情况。

该研究为解决口服疫苗递送难题提供了新范式,其模块化设计支持快速开发针对不同病原体的疫苗组合,特别适用于需要多价免疫的烈性传染病。根据WHO统计,全球每年因人畜共患病导致的死亡人数超过630万,该平台若能成功转化,有望在非洲猪瘟、高致病性禽流感等重大动物疫病防控中发挥关键作用。

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