长读长 16S rRNA 二代测序技术在临床诊断实验室细菌鉴定中的卓越价值与突破

时间:2025年4月23日
来源:Journal of Clinical Microbiology

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本文对比了桑格测序(16S SS)约 500bp 的 16S rRNA 基因序列和牛津纳米孔技术(ONT)长读长(~1,500nt)16S rRNA 二代测序技术对 153 株临床细菌分离株的鉴定效果。发现 16S ONT 在属水平分辨率更高,成本更低且周转时间更短,为临床细菌鉴定提供了新方案。

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引言


16S rRNA 基因测序常用于临床实验室鉴定生化特征不明确或无法用基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱(MALDI-TOF MS)鉴定的细菌病原体。桑格测序(16S SS)主要针对 16S rRNA 基因前约 500bp(涵盖可变区 1 - 3),准确性高,但存在成本高、耗时长、通量低等问题,且当该区域缺乏多样性时,难以进行属或种水平的鉴定。长读长纳米孔测序(牛津纳米孔技术,ONT)可实时测定全长(~1,500bp,涵盖所有 9 个可变区)16S rRNA 基因,分类学分辨率更高。尽管早期纳米孔测序技术读长错误率较高,但最新的 R10 测序化学技术通过 “双链碱基识别” 和改进同聚物识别,提高了准确性。此前研究多对比 16S rRNA 基因牛津纳米孔测序(16S ONT)和二代测序平台,对 16S ONT 和 16S SS 用于鉴定培养细菌分离株的比较分析较少,本研究旨在填补这一空白,并对比两种技术的成本和操作时间。

材料和方法


  1. 细菌分离株:从美国巴尔的摩约翰霍普金斯医院微生物实验室收集 153 株细菌临床分离株,其中 102 株为前瞻性临床分离株,无法用 MALDI-TOF MS 鉴定且被认为具有临床意义;51 株为根据临床和实验室标准协会(CLSI)MM18 A2 指南需更长 16S rRNA 基因序列来鉴定的挑战菌株。
  2. DNA 提取:16S SS 采用 PrepMan Ultra 样本制备试剂重悬细菌、煮沸、离心后取上清用于 PCR 扩增;16S ONT 因 PrepMan Ultra 试剂干扰测序,使用 Quick-DNA Fungal/Bacterial Miniprep 试剂盒提取 DNA,用 Qubit 4 荧光计和 NanoDrop 分光光度计分别测定 DNA 浓度和纯度。
  3. 16S rRNA 桑格测序:使用 MicroSEQ 500 16S rDNA PCR 试剂盒和 Applied Biosystems 3500 基因分析仪对 16S rRNA 基因的前 500bp(V1 - V3 区域)进行测序,用 ABS Sequence Scanner 软件分析原始跟踪文件,通过 Basic Local Alignment Search Tool(BLAST)搜索 IDNS 16S Centroid 数据库进行序列分类。
  4. 16S rRNA ONT 测序:按照制造商建议,使用 16S Barcoding Kit 1 - 24 或 16S Barcoding Kit 24 V14 进行文库制备,分别用 FLO-MIN111(v.R10.3)或 R10.4.1 流动池在 GridION 测序仪上测序,用 MinKNOW(v.21.11.7)平台和 Guppy v.5.1.13 进行高精度碱基识别和标准过滤,测序运行包含 22 个未知细菌、1 个阳性和 1 个阴性对照,将生成的 FASTQ 文件上传到 SmartGene Advanced Sequencing 平台。
  5. 生物信息学分析:SmartGene 的 16S 鉴定应用程序:将 16S ONT 的 FASTQ 文件加载到 SmartGene 的鉴定应用程序中,该程序自动执行文件转换、质量过滤、随机选择 1,000 条读长进行 BLAST 搜索、确定优势属、提取属内物种的质心序列、创建遗传图谱、比对生成共识序列、再次 BLAST 搜索并生成结果表等步骤。
  6. 确定稳定可靠共识所需的最小读长:从样本记录中随机选择 84 个包含至少 1,000 条读长的记录,以所有读长生成的共识为预期共识,将文件读长逐步减少为较小子集,计算每个子集共识与预期共识的汉明距离(HD),绘制 HD 总和与读长的关系图,确定稳定共识所需的最小读长。
  7. 确定 16S ONT 工作流程所需的最小测序运行时间:选择 138 个至少有 500 条读长的序列文件,确定达到 500 条读长所需时间,并比较 500 条读长和 72 小时测序后总读长所得共识的错配数和鉴定结果。
  8. 分类学分类和结果报告:根据 CLSI MM18 2A 指南进行鉴定水平的判定,当未达到物种和属水平的鉴定标准时,对匹配度≥95% 的最高匹配生物进行科水平鉴定,低于 95% 则判定为无法鉴定。此外,对比 16S SS 和 16S ONT 数据的顶级分类群,计算物种水平的一致性,排除匹配长度不符合要求的物种。
  9. 全基因组测序:对 16S SS 和 16S ONT 结果不一致的样本进行全基因组测序(WGS),使用 Quick-DNA Fungal/Bacterial Miniprep 试剂盒提取 DNA,Illumina DNA Prep 制备文库,用 Illumina NextSeq 仪器测序,将数据导入 PHoeNIx 生物信息学流程进行分析和物种鉴定。
  10. 统计分析:使用 McNemar 检验比较 16S SS 和 16S ONT 细菌鉴定的准确性,P 值 < 0.05 表示差异具有统计学意义。

结果


  1. 读长和错配数:纳米孔平台每个样本平均产生 20,029 条读长,不同细菌组的读长数量有所差异,有氧放线菌和分枝杆菌的读长最少。重复测序部分样本后发现,多数样本重复测序的错配数几乎相同,但个别样本增加读长后鉴定结果有所改变。
  2. 鉴定水平和细菌物种鉴定的一致性:根据 CLSI MM18 2A 指南,16S SS 在物种、属和科水平的鉴定率分别为 67%、21% 和 7%,16S ONT 分别为 73%、22% 和 5%,16S ONT 在属水平的鉴定能力显著提高。对于前瞻性菌株和挑战菌株,16S ONT 在不同分类水平的鉴定效果各有不同。不同细菌类群中,两种方法在物种水平的鉴定一致性有所差异,如革兰氏阳性球菌的一致性为 100%,革兰氏阴性杆菌中 16S ONT 虽能鉴定更多菌株到物种水平,但差异无统计学意义。
  3. ONT 测序运行时间和获得稳定共识及可靠鉴定所需的读长:分析 84 个随机样本发现,67 个(80%)样本在 6,000 条读长时的共识与总读长的共识相同;分析 138 个样本达到 500 条读长的时间,91% 的样本在 2 小时内达到,且多数样本 500 条读长的共识与总读长的共识相同,少数样本虽有差异但不影响鉴定结果。
  4. 物种水平鉴定不一致的细菌分离株的全基因组测序:对 17 个两种方法鉴定物种不一致的样本进行 WGS,多数样本因参考数据库中缺乏相关物种序列,无法确定明确的分类群,最终数据比较仍基于 CLSI MM18 2A 解释指南。
  5. 难以鉴定的细菌分离株的全基因组测序:对 6 个两种方法鉴定困难的样本进行 WGS,部分样本鉴定为新物种或因数据库缺乏相应基因组无法确定物种,部分样本重新分析更新数据库后鉴定结果有所改善。
  6. R10.3 和 R10.4.1 流动池性能比较:比较 R10.4.1 和 R10.3 流动池对 44 个分离株的测序结果,多数样本的最佳匹配物种和鉴定水平未改变,新化学技术未显著改善共识序列,两种技术在多数样本的鉴定结果相似。
  7. 样本到报告的时间和成本:两种方法从细菌分离到生成数据的操作时间相似,但 16S ONT 文库制备和获得 500 条读长所需时间较短,且成本远低于 16S SS。

讨论


  1. 两种测序方法的优势与局限:16S ONT 测序全长 16S rRNA 基因,整体鉴定准确性较高,能提高部分菌株的鉴定水平,但在某些物种中,16S ONT 的鉴定水平低于 16S SS,可能与现有鉴定指南不适用于全长测序结果有关。16S SS 仅覆盖部分基因,16S ONT 历史上碱基识别准确性较低,但 SmartGene 16S 鉴定应用程序可减少测序误差,未来 Q20 + 测序技术有望进一步提高准确性。
  2. 参考数据库的重要性:全基因组测序发现,部分难以鉴定的样本可能是新物种,部分样本因参考数据库缺乏相关序列无法确定分类。参考数据库中物种的充分代表性对测序分析结果至关重要,应定期更新和维护。
  3. 测序时间和成本分析:多数样本 2 小时内获得 500 条读长即可实现可靠鉴定,但放线菌和分枝杆菌等可能需要更长时间,这与它们的细胞壁组成、DNA 提取难度和基因组 GC 含量有关。16S ONT 虽操作时间未明显减少,但周转时间更短,成本更低。
  4. 研究的局限性:本研究存在一定局限性,如两种测序方法输出格式不同,Sanger 测序不适用于长读长,参考数据库不完整影响结果判定,缺乏针对全长 16S rRNA 测序的解释指南,新 ONT 技术虽有改进但本研究未显示出显著差异,还需更大规模研究。

结论


本研究对比了 16S SS 和 16S ONT 在细菌鉴定中的性能,16S ONT 在鉴定难以识别的细菌病原体方面表现更优,尤其是革兰氏阴性杆菌和厌氧菌,且能提高物种水平鉴定率,同时显著缩短周转时间和降低成本。然而,目前 CLSI MM18 2A 解释指南仅适用于 16S SS 对 16S rRNA 基因前 500bp 的测序,急需开发针对下一代测序平台全长 16S rRNA 基因测序结果的解释指南,并且需要开放访问全面的 curated 数据库,以更好地在临床微生物实验室评估该方法的结果。

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