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本研究创新性地将过表达PD-L1的β细胞微球(PD-L1 β-MCSs)与产氧藻类共封装于藻酸盐 hydrogel 中,构建具有免疫调节功能的人工胰腺(aPancreas)。PD-L1通过外泌体(Exo)诱导T细胞耗竭并促进巨噬细胞M2极化,同时藻类(Chlorella)通过光合作用缓解移植区缺氧。该双功能系统显著改善STZ诱导的1型糖尿病(T1D)小鼠高血糖,减少CD4+/CD8+ T细胞浸润和纤维化沉积,为T1D治疗提供新型细胞疗法方案。
1型糖尿病(T1D)的核心病理特征是胰岛β细胞被自身免疫系统破坏。当前胰岛移植面临供体短缺、免疫排斥和缺氧三大挑战。程序性死亡配体1(PD-L1)作为关键免疫检查点分子,可通过PD-1/PD-L1轴诱导T细胞耗竭。藻类(Chlorella)的光合作用能力为缺氧环境提供创新解决方案。
研究团队通过慢病毒转染构建稳定过表达EGFP-PD-L1的β细胞系,采用悬滴法培养成直径360-380μm的微球(β-MCSs)。透射电镜显示PD-L1 β细胞外泌体(Exo)直径70-80nm,Western blot证实其携带PD-L1和标志蛋白CD63/HSP70。共培养实验表明,这些Exo能通过结合CD4+ T细胞表面PD-1,使CD69+活化T细胞比例降低39.3%,并抑制巨噬细胞向促炎M1型分化。
将β-MCSs与产氧藻类共封装于藻酸盐 hydrogel,形成具有天然胰腺形态的植入体。体外实验显示该体系能响应葡萄糖浓度变化(2mM vs 20mM)动态分泌胰岛素,在缺氧环境下藻类可使溶解氧浓度提升2.3倍。蛋白质组学分析揭示PD-L1 β细胞Exo中糖酵解通路相关蛋白(如PKM、糖原磷酸化酶)表达显著改变。
在STZ诱导的T1D小鼠模型中,PD-L1-β-MCSs aPancreas移植组血糖在14天内恢复正常,且联合藻类治疗组维持正常血糖达60天。免疫组化显示移植体周围CD4+/CD8+ T细胞浸润减少70%,α-SMA+纤维化面积降低45%。葡萄糖耐量试验证实移植体具有生理性胰岛素分泌功能,C肽水平较空白组提高3.2倍。
该体系通过三重机制发挥作用:①PD-L1 Exo诱导局部免疫耐受;②藻类光合作用维持β细胞活力;③微球结构提供三维培养微环境。Masson染色显示联合治疗组胶原沉积减少58%,器官切片证实无肝肾功能损伤。这种将免疫编辑细胞与生物供氧系统整合的策略,为代谢性疾病的细胞治疗提供新范式。
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