鳞翅目昆虫中与RNA干扰(RNAi)效率相关的核酸酶的多样性

时间:2026年1月28日
来源:Insect Biochemistry and Molecular Biology

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RNA干扰效率相关核酶(REase)基因在鳞翅目昆虫中存在三个亚群(REase1-3),其中REase3起源于Asteroids的祖先基因重复事件,而REase1和2通过后续分化形成。该研究发现REase1在物种间呈现高拷贝数变异,而REase2和3多为单拷贝。通过家蚕模型分析,REase1和2在dsRNA处理后显著上调表达,协同Dicer2和Argonaute2抑制RNAi效率,提示其参与进化中的抗病毒免疫 arms race。这些成果为鳞翅目RNAi应用提供了新视角。

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长峰圭辅|凯由川拓海|渡边和代|田中良明
日本农业食品研究机构(NARO)农业生物科学研究所,茨城县筑波市大洗1-2,邮编305-8634

摘要

RNA干扰(RNAi)是一种保守的基因沉默机制;然而,其效率在不同昆虫类群中存在差异,在鳞翅目昆虫中尤其较低。最近发现了一种鳞翅目特异性的核酸酶——RNAi效率相关核酸酶(REase),它能够在双链RNA(dsRNA)暴露时对其进行降解。为了研究REase基因的多样性和潜在功能,我们对鳞翅目物种进行了系统发育分析,并对Spodoptera exigua进行了基因表达分析。研究发现了三个鳞翅目特异性的REase组(REase1–3)以及一个与Asteroid类相关的保守组,所有先前报道的REase基因都被归类为REase1。REase3可能起源于Asteroid类中的一个祖先基因重复事件,随后REase1和REase2从中分化出来。REase1和REase2在鳞翅目中广泛分布,但在某些谱系中不存在。值得注意的是,REase1在不同物种间的拷贝数存在显著变异,而REase2和REase3大多以单拷贝形式存在。表达分析显示,在dsRNA注射后,REase1REase2以及核心RNAi成分(如Dicer2Argonaute2)均显著上调。这种对dsRNA的响应性,加上REase的快速进化,表明它们可能参与了涉及快速进化的免疫挑战(如病毒)的进化军备竞赛。此外,REase同源基因的快速进化和频繁丢失(这是功能冗余基因的典型特征)表明REase2可能像REase1一样起到RNAi抑制剂的作用。这些发现突显了REase的进化多样性和潜在的功能冗余性,强调了它们在调节鳞翅目昆虫RNAi效率中的重要性。

引言

RNA干扰(RNAi)是一种保守的机制,在真核生物的各种生物过程中发挥着核心作用,包括转录调控、转录后基因沉默以及对抗转座元件和病毒感染(Agrawal等人,2003年;Ding,2010年;Torri等人,2022年)。该途径由小RNA(如小干扰RNA(siRNAs)和微RNA(miRNAs)介导,这些小RNA由Dicer(Dcr)处理并装载到RNA诱导的沉默复合体(RISC)上,其中Argonaute(Ago)蛋白指导互补目标RNA的切割或翻译抑制(Zhu和Palli,2020年)。自发现以来,RNAi已成为功能基因组学(Fraser等人,2000年;Gönczy等人,2000年)、害虫管理(Baum等人,2007年;De Schutter等人,2022年)和治疗应用(Setten等人,2019年)中的强大工具。
然而,昆虫中RNAi的效率在不同类群间差异很大。尽管许多甲虫类表现出高RNAi敏感性,表现为强烈的系统性基因敲低效应,但鳞翅目昆虫的RNAi反应往往较弱(Shukla等人,2016年;Terenius等人,2011年)。这种差异归因于双链RNA(dsRNA)的摄取、稳定性和系统传播的差异,dsRNA由Dcr处理成siRNA(Shukla等人,2016年;Singh等人,2017年;Yoon等人,2017年)。特别是,鳞翅目物种对外源性dsRNA的降解速度很快(Garbutt等人,2013年;Ivashuta等人,2015年;Singh等人,2017年),这成为基于RNAi的害虫控制策略成功的主要障碍(Lucena-Leandro等人,2022年)。
最近的研究发现了一种鳞翅目特异性的核酸酶——RNAi效率相关核酸酶(REase),它属于Asteroid蛋白家族,具有PilT N末端(PIN)结构域。REase通过降解dsRNA来发挥RNAi抑制剂的作用(Guan等人,2018年)。它最初在Ostrinia furnacalis中被鉴定并功能验证,在该物种中REase敲低后RNAi效率显著提高(Guan等人,2018年)。REase基因也在其他几种鳞翅目物种中被报道,包括Helicoverpa armigera(Guan等人,2019年)、O. nubilalis(Cooper等人,2020年)、Diatraea saccharalis(Abreu Reis等人,2022年)和Spodoptera frugiperda(Zhou等人,2024年)。然而,不同物种间的REase功能存在差异;例如,在H. armigera中敲除REase并未提高RNAi效率(Guan等人,2019年),这表明鳞翅目中REase基因存在功能分化。
降解dsRNA的核酸酶(dsRNases)属于DNA/RNA非特异性内切酶超家族,在昆虫中广泛分布,已在包括鳞翅目、甲虫目、双翅目、半翅目和直翅目在内的多个物种中进行研究(Arimatsu等人,2007年;Spit等人,2017年;Wynant等人,2014年;Yoon等人,2021年)。这些酶的基因拷贝数和dsRNA降解活性各不相同(Peng等人,2021年,2020a年,2020b年)。然而,与dsRNases不同,REase的进化和功能多样性仍知之甚少。
在这项研究中,我们研究了REase相关基因的多样性和进化历史,并讨论了它们在RNAi抑制和抗病毒免疫中的潜在功能。通过系统发育和全基因组分析,我们确定了三个REase亚组,即REase1、REase2和REase3(统称为“REases”),并探讨了它们在鳞翅目谱系中的分布和分化情况。以Spodoptera exigua为模型,进一步研究了其对dsRNA处理的基因表达反应。我们的发现为REases的进化和功能分化提供了新的见解,强调了在开发针对鳞翅目的基于RNAi的害虫控制策略时考虑REase多样性的必要性。

部分内容摘录

S. exigua中鉴定REase相关基因

为了鉴定S. exigua中的REase相关基因,使用NCBI Web BLAST工具(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)对S. exigua基因组(GenBank组装:GCA_902829305.4)进行了tBLASTn搜索,参数使用默认设置。以Ostrinia furnacalis中的REase蛋白(OfREase;GenBank登录号:AYE20402.1)作为查询序列,得到了四个候选的REase相关基因。为了确定相应的转录本,对这些基因的核苷酸序列进行了分析

S. exigua中全基因组范围内调查REase相关基因

为了了解基因组内REase相关基因的多样性,使用tBLASTn对S. exigua中的OfREase同源基因进行了全基因组搜索。共鉴定出四个候选基因:两个位于26号染色体上(分别命名为gene26-1gene26-2),一个位于19号染色体上(gene19),另一个位于5号染色体上(gene5)(表1)。序列比较显示gene26-1gene26-2之间的核苷酸和氨基酸相似性较高,而gene19gene5之间的相似性较低

结论

我们的发现突显了REases的进化和功能多样性,强调了这一基因家族在基于RNAi的应用(包括害虫管理和功能基因组学)中的重要性。在某些物种中,针对单个REase可能就足以提高RNAi效果,而在其他物种中,则可能需要更广泛的策略,例如同时抑制多个REase或破坏共同的调控途径。需要进一步研究以阐明这些机制

CRediT作者贡献声明

渡边和代:撰写——审稿与编辑,研究。凯由川拓海:撰写——审稿与编辑,概念构思。田中良明:撰写——审稿与编辑,资源准备,概念构思。长峰圭辅:撰写——审稿与编辑,初稿撰写,可视化,验证,资源准备,项目管理,研究实施,资金获取,数据分析,概念构思

数据可用性

本研究中使用的所有数据均包含在数据集S1–S6中。

关于写作过程中使用生成式AI和AI辅助技术的声明

在准备本工作时,作者使用了ChatGPT-4o来提高手稿的可读性和语言表达。使用该工具后,作者根据需要对内容进行了审阅和编辑,并对发表文章的内容负全责。

资金来源

本工作部分得到了JSPS KAKENHI项目的资助(项目编号:22K14903和24K08925,资助对象为K.N.)

利益冲突声明

K. N.和Y. T.是NARO提交的专利申请的发明人,这些专利申请包含了本研究的部分数据。其他作者没有已知的可能会影响本文所述工作的财务利益或个人关系。

致谢

我们非常感谢日本植物保护协会提供的Spodoptera exigua实验菌株。同时,我们也感谢中仓孝代女士在实验工作中的协助,以及长峰玛丽亚·M.女士在图表制作方面的帮助。

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