细胞外囊泡(EVs)是细胞间通信的纳米级媒介,能够运输影响各种生理和病理过程的生物活性物质[1]、[2]、[3]。根据其生物生成途径,EVs传统上被分为三种亚型:凋亡小体、微囊泡(MVs)和外泌体[4]、[5]、[6]。由于它们在大小范围和表面标记物上的显著重叠,且缺乏统一的标准分离方法,准确区分这些亚型极具挑战性[7]、[8]。因此,除非特别讨论某种亚型,否则本综述将使用“EVs”这一通用术语。作为下一代诊断工具、药物递送系统和无细胞疗法,EVs在转化医学领域具有巨大潜力[9]、[10]、[11]。然而,这一前景是否能在临床环境中完全实现,关键在于克服存储不稳定性这一重大挑战。越来越多的证据表明,不理想的存储条件会引发有害的物理和化学变化,包括聚集、膜破裂和内容物泄漏,这些都会严重损害EVs的治疗效果和诊断可靠性[12]、[13]、[14]、[15]、[16]、[17]。然而,不同研究的结果并不一致,有时甚至相互矛盾。这种异质性主要是由于不同研究中使用的EV来源、分离技术和表征方法存在差异[9]、[18]、[19]。例如,与来自巨噬细胞系的EVs相比,来自牛奶的EVs具有更强的冻融耐受性[20];唾液来源的EVs可以在4°C下稳定保存数月[21],而其他来源的EVs在该温度下会迅速降解[22]。除了经验观察外,EV稳定性的分子决定因素也在逐渐被阐明。例如,研究发现,来自不同细胞系的EVs在冷冻稳定性上的差异归因于特定的蛋白质组特征,特别是tetraspanin 4(TSPAN4)的丰度[23]。TSPAN4通过胆固醇依赖的相互作用稳定EV膜,从而赋予EV对冷冻的抵抗力,为EV对冷冻保存的耐受性差异提供了机制解释[23]。
至关重要的是,目前大多数研究采用以来源为中心的策略,专注于为特定生物液体(如血液或尿液)定制存储方案[14]、[24]、[25]。这种策略往往忽略了更关键的因素:预期的临床应用。作为诊断生物标志物、药物递送系统或治疗剂的EVs,其稳定性要求存在根本差异——对于前者来说,保持特定载荷(如miRNA)的完整性至关重要;而对于后者来说,保持整体生物功能是主要目标[26]、[27]。
为了进一步推动EVs向临床应用的深入转化,有必要系统地探索针对临床应用的存储稳定性。总体而言,本综述全面总结了现有的保存策略,包括冷冻保存、喷雾干燥和冷冻干燥技术。同时,还批判性地评估了存储条件对EVs关键质量属性(如膜完整性、内部载荷完整性、功能性生物活性、免疫原性和一致性)的影响。其次,本综述从三个主要临床领域(例如诊断生物标志物、药物递送系统和无细胞疗法)的角度系统评估了EVs的相应存储要求。这旨在更准确地了解EVs在不同应用环境中的存储稳定性特征和要求。最后,我们提出了有前景的优化策略,并提出了未来的研究方向,以促进基于EV的技术在临床实践中的稳定转化。