细胞外囊泡(EVs)通过运输生物活性分子,在从疾病进展到组织修复的各种生物过程中充当细胞间通讯的天然介质。1, 2 由于具有生物相容性、低免疫原性和向受体细胞递送功能性货物的能力,EVs已成为有前景的药物递送载体。3, 4 然而,研究EVs的分布、细胞摄取和功能机制需要可靠的标记技术,这些技术不应改变其天然特性。目前的标记策略面临重大挑战,包括聚集、不稳定性和非特异性结合,这些因素限制了准确的追踪和量化。5
EV表面工程方法包括基因修饰和化学标记。基因策略(如将目标蛋白(例如抗体、肽或酶)与富含EV的膜蛋白(例如PTGFRN、Lamp2b)融合)可以实现稳定和特异性的表面展示。6, 7, 8 基因方法具有高精度,但仅限于可进行基因修饰的细胞来源,限制了其在来自患者样本的临床EVs中的应用。相比之下,化学标记方法为分离后的EV修饰提供了一种快速且通用的替代方案。然而,标记稳定性、非特异性结合和颗粒聚集仍然是可靠化学EV追踪策略的关键挑战。这些局限性凸显了需要一种稳定、定量的EV标记方法。
为了解决这些问题,我们的研究采用了三种EV标记策略:(1)共价HaloTag蛋白-配体系统;(2)传统的膜插入型亲脂染料DiD;(3)新型的胆固醇锚定反义寡核苷酸化学修饰策略。我们从多个维度全面评估了这些方法:标记效率、聚集诱导、特异性、配体/探针结合的稳定性以及细胞摄取实验中的信号准确性。我们期望这项研究能为根据具体研究目标选择EV标记方法提供明确的实验基础和决策框架,并推动下一代更可靠、更智能的EV标记和功能化平台的发展。