对外膜囊泡进行温度依赖性的蛋白质组学分析后发现,Pseudomonas plecoglossicida中与毒力相关的蛋白质含量较高

时间:2026年5月16日
来源:Aquaculture

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刘月江波|姜敏|奚霞|张超正|谢建军|王伟|王庚申|徐文军浙江海洋大学渔业学院,舟山316022,中国摘要Pseudomonas plecoglossicida是一种对温度敏感的鱼类病原体,对水产养殖构成了严重威胁,但温度如何影响其外膜囊泡(OMVs)中的蛋白质成分仍不清楚。在此

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刘月江波|姜敏|奚霞|张超正|谢建军|王伟|王庚申|徐文军
浙江海洋大学渔业学院,舟山316022,中国

摘要

Pseudomonas plecoglossicida是一种对温度敏感的鱼类病原体,对水产养殖构成了严重威胁,但温度如何影响其外膜囊泡(OMVs)中的蛋白质成分仍不清楚。在此,我们使用基于DIA的LC-MS/MS技术比较了在18°C和28°C下产生的OMV蛋白质组。共鉴定出1471种差异表达蛋白质(DAPs),其中18°C时659种蛋白质上调,812种蛋白质下调。功能富集分析显示,18°C时上调的蛋白质主要与DNA修复、信号传导和代谢途径相关,而下调的蛋白质则主要与运输和膜结构有关。几种与OMV相关的蛋白质在18°C时明显上调,包括III型和VI型分泌系统的组分、一种AMP结合蛋白、一种patatin样磷酸脂酶家族蛋白(PNPLA3283)、一种TauD/TfdA家族双加氧酶、一种AraC家族转录调节因子(AraC2016)以及一种T3SS顶端蛋白LcrV。删除PNPLA3283AraC2016lcrV会降低P. plecoglossicida对大黄鱼的毒力。值得注意的是,删除lcrV显著提高了宿主的存活率并减少了脾脏结节。这些结果表明,低温改变了OMV的蛋白质组成,使其更倾向于与宿主相互作用和环境适应相关,并确定LcrV是一个重要的决定因素。本研究为P. plecoglossicida的OMV蛋白质组在温度依赖性变化方面提供了新的见解。

引言

Pseudomonas plecoglossicida是一种革兰氏阴性细菌病原体,最初被确定为日本纯黄鱼(Plecoglossus altivelis)细菌性出血性腹水病的病原体(Nishimori等人,2000年)。随后,它被发现是影响全球多种鱼类的主要病原体,特别是导致大黄鱼(Larimichthys crocea)“内脏白斑病”,其特征是内部器官上形成白色结节(Zhang等人,2014年)。P. plecoglossicida已被证明是一种温度依赖性病原体(Huang等人,2018年;Huang等人,2019年),感染和疾病爆发主要发生在12°C至20°C的低温范围内(Li等人,2020年;Tao等人,2016年)。在大黄鱼养殖过程中,由P. plecoglossicida引起的内脏白斑病是最严重的细菌感染之一,通常导致高死亡率和经济损失。
温度是影响P. plecoglossicida毒力的关键环境因素。多项研究表明,P. plecoglossicida的致病性依赖于温度,在较低温度下毒力明显增强(Huang等人,2018年;Tao等人,2016年)。例如,Tao等人(Tao等人,2016年)报告称,溶血素共调节蛋白(Hcp)——VI型分泌系统(T6SS)的关键组分,在20°C时高度上调,与细菌毒力的增加相关。进一步的比较转录组学和蛋白质组学分析表明,在较低温度下,多种与毒力相关的基因和蛋白质显著上调,从而增强了病原体的感染性。值得注意的是,关键T6SS组分如hcpdotUicmF在18°C时的表达明显增加(Huang等人,2018年),这有助于增强细菌的毒力。此外,在较低温度下,参与吡咯哆呤生物合成的基因也上调。吡咯哆呤是Pseudomonas中的主要铁载体,在宿主铁限制条件下发挥关键作用(Huang等人,2018年)。此外,替代sigma因子RpoE作为一种温度响应调节因子,在控制P. plecoglossicida中的T6SS表达、生物膜形成和巨噬细胞内的复制中起重要作用(Zhang等人,2023年)。这些结果表明,分泌系统、铁获取和全局应激响应调节因子在P. plecoglossicida的温度依赖性致病性中起着关键作用。
尽管已经对这些较低温度下的转录和蛋白质组学反应有了了解,但细胞外毒力传递系统(特别是外膜囊泡(OMVs)在温度依赖性致病性中的作用仍知之甚少。近年来,细菌膜囊泡(包括OMVs)越来越被认为是通过介导毒力因子运输和宿主-病原体相互作用来促进细菌致病性的关键因素(Xiu等人,2024年)。细菌会自然释放纳米级细胞外囊泡(EVs),直径通常在20到400纳米之间(Toyofuku等人,2019年)。来自革兰氏阴性细菌的EVs通常被称为OMVs,OMVs从母细胞中选择性包装特定的分子货物,包括蛋白质、DNA、RNA、脂多糖(LPS)和多种代谢产物(Schwechheimer和Kuehn,2015年;Tulkens等人,2020年)。OMVs含有多种生物活性货物,如毒素、RNA、分泌系统组分、酶和信号分子。这些囊泡是一种重要的非经典分泌途径,参与多种与毒力相关的过程,包括宿主免疫调节、细胞间通讯、促进生物膜形成以及在感染期间传递毒力因子(Guerrero-Mandujano等人,2017年;Lee等人,2016年;Toyofuku等人,2019年;Xiu等人,2025年)。
最近的蛋白质组学研究表明,细菌OMVs含有有助于水生动物病原体生存、适应性和免疫调节的毒力因子。例如,由引起弧菌病的Vibrio ordalii产生的OMVs已被证明携带RTX毒素以及促进宿主感染的铁和血红素吸收蛋白(Echeverría-Bugueño等人,2020年)。同样,由引起对虾急性肝胰腺坏死病(AHPND)的Vibrio parahaemolyticus产生的OMVs已被证明携带多种与毒力相关的组分,包括毒素蛋白PirAvpPirBvp以及免疫调节蛋白,这些在疾病发展中起关键作用(Wang等人,2024年)。此外,来自Photobacterium damselae亚种Piscicida(phdp)的OMVs已被鉴定为外膜蛋白和其他抗原成分的载体,这些成分有助于细菌逃避宿主的抗菌肽并引发鱼的免疫保护(Teixeira等人,2023年)。尽管取得了这些进展,但OMVs在温度依赖性致病性调节中的作用仍大部分未得到探索。P. plecoglossicida在较低温度下表现出增强的毒力。然而,P. plecoglossicida产生的OMVs及其在温度依赖性致病性中的作用尚未得到充分研究。
在这项研究中,我们证明了P. plecoglossicida在体外和宿主感染期间都会产生OMVs。为了探索它们在温度依赖性致病性中的潜在作用,我们使用透射电子显微镜(TEM)、动态光散射(DLS)和定量LC-MS/MS蛋白质组学技术系统地分析了在18°C和28°C下分泌的OMVs。比较蛋白质组学分析显示OMV蛋白质组成存在明显的温度依赖性差异。特别是,18°C下产生的OMVs富含多种与毒力相关的蛋白质,删除编码代表性OMV相关因子的三个基因(PNPLA3283AraC2016lcrV)显著降低了P. plecoglossicida对大黄鱼的毒力。总的来说,我们的发现表明P. plecoglossicida的OMV蛋白质组随温度变化,且在低温下产生的OMVs含有更多与毒力和环境适应相关的蛋白质。这项研究提供了不同温度条件下P. plecoglossicida OMVs的全面蛋白质组谱,提高了我们对温度相关细菌适应性的理解。这些结果还为未来的基于OMV的水产养殖诊断和疫苗开发提供了候选标志物和靶点。

章节片段

伦理声明

本研究中的所有动物实验均获得了浙江省海洋渔业研究所(2025008)机构动物护理和使用委员会(IACUC)的批准。

细菌菌株和培养条件

本研究使用了从患病的大的黄鱼中分离出的P. plecoglossicida菌株1403001。该菌株在28°C下培养于胰蛋白酶大豆肉汤(TSB)培养基或TSB琼脂平板(TSA)上。对于温度依赖性实验,将过夜培养的菌液(1%,v/v)接种到新鲜的TSB培养基中

Pseudomonas plecoglossicida 1403001菌株在不同温度下在体外产生OMVs

由于P. plecoglossicida通常在低温下引起疾病爆发,因此在不同温度条件下检测了OMVs的产生情况。对在18°C和28°C下培养的P. plecoglossicida 1403001进行的TEM分析显示,细菌细胞周围有许多球形囊泡(图1A-D)。这些囊泡表现出典型的OMVs形态特征,包括双层膜结构和预期大小的直径。为了确认这一点

讨论

细菌OMVs日益被认为是细菌交流和宿主-病原体相互作用的关键媒介,它们在毒力因子的传递、免疫调节和应激适应中发挥作用(Toyofuku等人,2023年)。P. plecoglossicida是大黄鱼内脏白斑病的致病因子,在低温下主要引起疾病爆发(Huang等人,2018年;Tao等人,2016年)。然而,

CRediT作者贡献声明

刘月江波:撰写——初稿、可视化、验证、调查。姜敏:撰写——审稿与编辑、撰写——初稿、方法学、资金获取、概念化。奚霞:验证、调查。张超正:可视化、资源。谢建军:监督、资源。王伟:资源、方法学。王庚申:验证、资源。徐文军:撰写——审稿与编辑、资金获取、概念化。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的可能影响本文工作的财务利益或个人关系。

致谢

本研究得到了浙江省自然科学基金(资助编号:LQN25C190015)、国家自然科学基金(资助编号:32503050)、国家重点研发计划(资助编号:2024YFD2401704)、舟山渔业养殖与苗种培育科技创新中心专项项目(资助编号:2025Y001-6)和浙江省海洋渔业研究所科学技术计划(资助编号:HYS-CZ-202504)的支持。

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