两种杜鹃鹀宿主识别卵的机制

时间:2026年5月18日
来源:Avian Research

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张宇涵|王龙武|梁伟 中国海南省海口市海南师范大学生命科学学院,热带岛屿生态学教育部重点实验室,海南省热带动植物生态学重点实验室,邮编571158 **摘要** 识别和排斥寄生卵是宿主对抗巢寄生行为的关键防御机制。鸟类宿主主要采用基于模板的识别方法和基于差异性的识别

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张宇涵|王龙武|梁伟
中国海南省海口市海南师范大学生命科学学院,热带岛屿生态学教育部重点实验室,海南省热带动植物生态学重点实验室,邮编571158

**摘要**
识别和排斥寄生卵是宿主对抗巢寄生行为的关键防御机制。鸟类宿主主要采用基于模板的识别方法和基于差异性的识别方法来识别寄生卵。然而,即使在利用基于模板识别方法的宿主体内,如果巢中模板数量减少或完全缺失,当寄生卵与宿主卵之间的差异较小时,宿主的判断能力也可能受到影响。本研究以两种同域繁殖的雀类——戈德列夫斯基雀(Emberiza godlewskii)和黄喉雀(E. elegans)为研究对象,这两种鸟类都是普通杜鹃(Cuculus canorus)的潜在宿主。为了探讨它们的卵识别机制,我们引入了红色模型卵、虎皮鹦鹉(Melopsittacus undulatus)卵以及不同比例的种间卵和种内卵,并观察了这两种雀类的排斥行为。结果表明,这两种雀类主要通过基于模板的识别方法来排斥寄生卵。然而,当寄生卵与宿主卵之间的差异极小时,随着宿主卵数量的减少,它们的排斥率也会下降。我们的研究结果支持这样的观点:杜鹃的反复产卵行为可能提高了其寄生成功率。但由于杜鹃种群密度的限制以及杜鹃在繁殖投入与收益之间的权衡,这两种具有较强卵识别能力的雀类很少受到寄生。

**1. 引言**
鸟类巢寄生是一种寄生行为,也是研究物种间协同进化关系的经典模型(Davies等人,1989;Rothstein,1990;Feeney等人,2014;Soler,2014)。寄生鸟会在宿主巢中产卵,迫使宿主负责孵化和抚养这些卵,从而承担巨大的繁殖成本(Davies,2000)。进化压力促使宿主发展出识别和排斥寄生卵的机制,同时寄生鸟也进化出了卵模仿能力以逃避宿主的识别(Davies,2000;Feeney等人,2014;Soler,2017)。准确的卵识别对于宿主排斥寄生卵至关重要(Hauber和Sherman,2001)。鸟类宿主通常采用两种卵识别机制:(1)基于模板的识别(Rothstein,1974;Hauber和Sherman,2001;Hauber等人,2006),即宿主通过先天印记或在首次繁殖过程中学到的印记来记住自身卵的特征,以此作为识别寄生卵的模板;(2)基于差异性的识别,即宿主根据卵的表型差异来排斥最不相似的卵(Rothstein,1974,1975;Moskát等人,2010,2014b)。尽管基于模板的识别方法更为常见,但两种机制可以同时发挥作用(Moskát等人,2014b;Yang等人,2014b;Wang等人,2015)。研究表明,宿主利用基于模板识别方法排斥寄生卵的能力会随着巢中寄生卵的数量和比例而变化(Stevens等人,2013),这与传统认知相悖(Moskát和Hauber,2007;Moskát等人,2010)。例如,Stevens等人(2013)发现,在黄侧普里尼亚鸟(Prinia subflava)中,当高度相似的寄生卵比例增加时,排斥率会下降。他们认为寄生鸟对同一巢的反复攻击会削弱宿主的卵识别能力,从而促进寄生成功。由于宿主利用多种卵特征来识别和排斥寄生卵,参考卵的缺乏可能导致它们无意中接受模仿不完美的寄生卵(Spottiswoode和Stevens,2010)。宿主的卵识别能力因种群和物种而异,主要受寄生压力的影响(Røskaft等人,2002;Feeney等人,2014)。理论上,受到更高寄生压力的宿主应具有更强的卵识别和排斥能力。然而,一些很少受到寄生的宿主仍表现出较强的卵识别能力,这可能是它们在摆脱寄生系统后保持的适应性行为(Honza等人,2004;Martín-Vivaldi等人,2013;Yang等人,2014a;Medina和Langmore,2015)。雀类(Emberiza spp.)是小型鸣禽,通常在地面或低矮植被中筑巢;尽管它们被认为是杜鹃(Cuculus spp.)的适宜宿主,但很少受到寄生(Wyllie,1981;Moksnes和Røskaft,1995;Yang等人,2012;Liu等人,2025)。研究表明,很少受到寄生的黄鹀(Emberiza citrinella)和普通苇鹀(E. schoeniclus)对寄生卵的识别能力较强,而经常受到寄生的玉米鹀(E. calandra)的识别能力较弱(Moksnes等人,1991;Moksnes和Røskaft,1992;Procházka和Honza,2004)。这些发现表明,准确的卵识别能力可能解释了为什么许多雀类物种能够避免成为杜鹃的主要宿主。据我们所知,目前尚无研究探讨雀类如何识别寄生卵的具体机制。戈德列夫斯基雀(Emberiza godlewskii)和黄喉雀(E. elegans)(AviList核心团队,2025)是普通杜鹃(Cuculus canorus)的潜在宿主(Zhang等人,2023)。这两种同属物种在卵表型上有一定相似性,但斑点类型不同。先前的研究表明,这两种雀类都能有效识别非模仿卵(Zhang等人,2023,2024),但迄今为止仅记录了一次杜鹃寄生非模仿卵的案例(Zhang等人,2023)。本研究旨在确定这两种雀类的卵识别机制。为此,我们将四种不同相似度的寄生卵放入宿主巢中(宿主卵与寄生卵的比例不同),并观察宿主的行为:红色模型卵(图1A)、纯白色虎皮鹦鹉卵(图1B)、近缘物种卵(这两种雀类之间的卵称为“种间卵”)以及种内卵。根据Stevens等人(2013)的研究预测,随着巢中与宿主卵高度相似的寄生卵比例增加,两种雀类的卵排斥率会下降。

**2. 材料与方法**
**2.1. 研究区域和物种**
数据收集自2022年至2024年4月至8月期间中国贵州省六枝特区(北纬26°10′–26°14′,东经105°13′–105°24′)。该地区具有温暖湿润的亚热带季风气候,以喀斯特山地景观为特征,包含村庄、农田和植被茂密的河流,栖息着多种寄生鸟类,如普通杜鹃、小杜鹃(C. poliocephalus)、亚洲鹃(Eudynamys scolopaceus)和大鹰鹃(Hierococcyx sparverioides)(Zhang等人,2023)。戈德列夫斯基雀和黄喉雀均属于雀科(Emberizidae)和雀形目(Passeriformes)。本研究中的戈德列夫斯基雀曾被称为云南岩雀(Emberiza yunnanensis)(Li等人,2023),现已归类为戈德列夫斯基雀的一个亚种(Emberiza godlewskii yunnanensis)(AviList核心团队,2025)。其典型窝卵数为3–5枚,卵呈灰白色,带有黑色或棕色条纹或棒状斑点(图1C–E)。雌鸟负责孵卵,孵化期为11–12天(Ding等人,2019)。黄喉雀的窝卵数也为3–6枚,卵呈灰白色,带有黑色或棕色斑点(图1F–H)。雌雄鸟轮流孵卵,孵化期同样为11–12天(Ding等人,2019)。这两种雀类每年4月至8月在同一区域同域繁殖,种群数量相对较多。尽管从体型、筑巢特征和雏鸟饮食来看,它们都适合成为杜鹃的宿主,但在该地区的多个寄生系统中未发现以雀类为主要宿主的杜鹃物种。

**2.2. 卵识别机制实验**
实验中使用了四种不同相似度的寄生卵:(1)红色模型卵(由黏土制成),在材料和表型上与宿主卵明显不同;(2)虎皮鹦鹉卵(人工培育的未受精卵),颜色与宿主卵相似但无斑点;(3)种间卵,带有不同类型的斑点;(4)种内卵,模仿度最高。红色模型卵和虎皮鹦鹉卵的尺寸参考了宿主卵的实际情况(Zhang等人,2023)。在孵化初期,从实验巢中移除部分宿主卵,并按不同比例添加寄生卵:(1)2:2(2枚宿主卵:2枚寄生卵);(2)1:3(1枚宿主卵:3枚寄生卵);(3)全窝替换(即移除所有原始卵并替换为指定卵)。对于红色模型卵组和虎皮鹦鹉卵组,替换为4枚非模仿卵。对于种间卵替换组和种内卵对照组,选择窝卵数相同的配对巢进行全窝替换(不固定为4枚卵)。

我们设置了以下实验处理:
(1)为了研究这两种雀类的卵识别机制,我们使用不同类型的寄生卵进行了“2:2”和全窝替换实验(红色模型卵、虎皮鹦鹉卵和种间卵)。对于进行全窝替换的实验巢,连续观察三天以确定亲鸟是否接受所有替换卵。如果接受,则将巢中的一枚卵替换为宿主自身的卵(或使用从自然放弃或被捕食的巢中收集的种内卵),形成一枚宿主卵和多枚寄生卵的组合(具体比例取决于原始窝卵数,如1:2、1:3或1:4)。这旨在测试引入匹配的模板是否能唤起宿主的记忆并诱导其对剩余种间卵的排斥。随后进行完整实验周期的观察。
(2)对于虎皮鹦鹉卵,我们还进行了“1:3”实验(即1枚宿主卵:3枚寄生卵),以探讨当宿主卵成为少数“差异卵”时的行为反应。
(3)设置了全窝替换的对照组,使用种内卵进行全窝替换。

这两种雀类均表现出较高的卵识别和排斥能力(Zhang等人,2023),但我们发现,在排斥卵后,如果巢中剩余卵数少于3枚,它们容易放弃巢穴。但如果巢中卵数在短时间内恢复,它们不会放弃巢穴。为防止宿主放弃巢穴,使用迷你摄像机(HD99S-32G,深圳Skywork Digital有限公司,中国深圳)记录实验巢1–2小时。如果在此期间观察到宿主至少排斥一枚寄生卵或啄击寄生卵,则记录为排斥行为,并恢复巢穴结构。如果没有排斥行为,每天检查一次巢穴。如果至少有一枚卵被移除或损坏,则记录为排斥行为,并恢复巢穴结构(模型卵表面有明显的啄击痕迹)。如果在整个实验周期内宿主未表现出任何排斥行为(包括卵排出、啄击/损坏或弃巢),且巢中所有卵均完好无损并正常孵化,则记录为接受行为。每个实验周期持续六天(Zhang等人,2023年),并且每个巢穴中的实验不会重复进行。在涉及自然巢穴之间卵交换的实验中,卵的数量往往会有所不同。因此,应尽可能选择卵数相似的巢穴进行交换。只有当巢穴中至少有四个卵时,才应进行2:2的卵交换。如果巢穴中的卵超过四个,多余的卵应暂时放在孵化器中以确保其存活,并在实验完成后重新放回巢穴。在卵交换过程中,如果一个巢穴在另一个巢穴之前完成实验,那么前者的实验卵应暂时存放在孵化器中。为了减少巢穴因拒绝外来卵而放弃的风险,在实验期间会从被遗弃或被掠夺的巢穴中收集同种卵作为替代品。这些替代卵在交换实验结束后会被替换回原来的巢穴中。

2.3 数据分析
我们使用了二元逻辑回归模型来评估物种、实验类型、卵的比例和卵的数量对宿主行为反应结果(接受或拒绝)的影响。模型包括物种(南岩鹀、黄喉鹀)、实验类型(红色模型卵、虎皮鹦鹉卵、种间卵)、卵的比例(2:2、整窝交换)和卵的数量作为固定效应。分析采用了二项错误结构和对数链接函数,并计算了比值比(OR)及其95%置信区间(CI),以评估效应的大小和方向。物种、实验类型和卵的比例被视为分类变量,其中南岩鹀、红色模型卵和2:2分别作为参考水平;卵的数量被视为连续变量。由于1:3的处理仅适用于虎皮鹦鹉卵,而同种卵仅用于整窝交换的对照,因此这两个处理组没有包含在模型中,仅作为描述性统计数据进行报告。统计显著性标准设定为P < 0.05。所有数据分析均在R 4.3.0(R核心团队,2023年)中进行,逻辑回归模型使用glm函数拟合。

3. 结果
3.1 描述性统计
本研究总共对84个戈德莱夫斯基鹀巢穴和91个黄喉鹀巢穴进行了实验。每个实验组的样本量和拒绝率见表1。结果显示,在1:3的处理中,两种鹀对虎皮鹦鹉卵的拒绝率为100%,而在整窝交换的对照处理中,两种鹀对同种卵的拒绝率为0%。

表1. 两种鹀对不同比例实验卵的拒绝率和样本量
卵的类型 | 比例(宿主:外来卵) | 卵的拒绝率(%)
-----------------|-----------------|-------------------
Emberiza godlewskii (n) | E. elegans (n) |
红色模型卵 | 2:2 | 73 (11) | 79 (14) |
整窝交换 | 80 (10) | 90 (10) |
虎皮鹦鹉卵 | 2:2 | 80 (10) | 100 (11) |
1:3 | 100 (11) | 100 (10) |
整窝交换 | 90 (10) | 100 (9) |
种间卵 | 2:2 | 73 (11) | 75 (12) |
整窝交换 | 25 (12) | 54 (13) |
同种卵 | 整窝交换 | 0 (9) | 0 (12)

3.2 预测因素对拒绝率的影响
二元逻辑回归模型确认两种物种之间的拒绝率没有显著差异(图2A;OR = 1.465, β = 0.382, 95% CI [0.582, 3.689], P = 0.417)。

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图2. 不同预测因素对宿主拒绝率影响的贝叶斯混合效应逻辑回归模型结果(A,物种,参考组:戈德莱夫斯基鹀;B,C,实验卵,参考组:红色模型卵;D,卵的比例,参考组:2:2)。
与红色模型卵相比,宿主对虎皮鹦鹉卵的拒绝率更高,尽管这种差异没有统计学意义(图2B;OR = 4.039, β = 1.396, 95% CI [0.952, 17.146], P = 0.058)。相比之下,种间卵的拒绝率显著更高(图2C;OR = 0.343, β = −1.069, 95% CI [0.127, 0.925], P = 0.035)。巢穴中自身卵与外来卵的比例对拒绝率也没有显著影响(图2D;OR = 0.914, β = −0.090, 95% CI [0.362, 2.308], P = 0.849)。此外,卵的数量对拒绝率有显著影响(图2E),结果表明较大的原始卵数量与宿主对外来卵的更高拒绝率相关(OR = 4.180, β = 1.430, 95% CI [1.557, 11.219], P = 0.005)。

3.3 卵重新引入的结果
在整窝交换实验中,12个南岩鹀巢穴中有9个接受了所有替换卵。在这9个巢穴中,每个巢穴中的一个卵随后被替换为宿主自身的卵(或同种卵)。在此替换之后,有两个巢穴拒绝了重新引入的自身卵,同时继续孵化巢穴中的其余种间卵;其他7个巢穴接受了所有卵,包括自身的卵。在黄喉鹀(n = 13)中,有6个巢穴接受了所有种间卵。在将一个卵替换为宿主自身的卵后,有一个巢穴拒绝了所有卵并离开了巢穴(包括重新引入的自身卵和现有的种间卵),而其余巢穴接受了所有卵。

4. 讨论
研究结果表明,当外来卵是完全不相似的红色模型卵和虎皮鹦鹉卵时,无论巢穴中宿主卵与外来卵的数量和比例如何,两种鹀的拒绝率都很高,并且没有观察到错误地拒绝自身卵的情况。然而,随着外来卵与宿主卵的相似度增加,两种鹀对更相似的种间卵的拒绝率显著下降,且随着巢穴中种间卵的比例增加,拒绝率也趋于下降。此外,亲代鹀的拒绝率随着卵的数量增加而增加。
两种鹀都能准确识别自己的卵,并在任何组合下拒绝不相似的外来卵,这表明它们使用了基于模板的识别机制。这一发现与先前的研究结果一致(Lotem等人,1995年;Lahti和Lahti,2002年;Strausberger和Rothstein,2009年;Lang等人,2014年;Wang等人,2015年;Ma和Liang,2021年)。先前的研究表明,这两种鹀具有很强的识别和拒绝外来卵的能力,无论这些卵在巢穴中的位置如何(Zhang等人,2023年,2024年)。我们的当前研究证实了识别外来卵的基于模板的机制。我们还发现,一些未能拒绝外来卵的个体可能无法物理移除外来卵,这在大多数情况下导致巢穴被放弃。因此,这种基于模板的识别机制加上对外来卵的强烈厌恶和拒绝,可能是这些鹀没有成为杜鹃主要宿主的原因,尽管它们适合被寄生。这种强大的卵拒绝能力可能是在长期寄生压力下进化而来的,即使它们已经摆脱了寄生系统(Honza等人,2004年;Yang等人,2014a)。
然而,在种间交换实验中,当存在宿主自身的卵时,拒绝率往往比没有宿主自身卵时更高。这些发现与Stevens等人(2013年)的研究结果相似,他们报告说,当宿主卵与外来卵之间的差异减小时,外来卵的数量和比例增加意味着与宿主模板匹配的卵的数量减少,导致宿主对外来卵的拒绝率降低。Stevens等人(2013年)因此提出,杜鹃的多次寄生可以有效地利用依赖基于模板识别机制的宿主。然而,与Stevens等人(2013年)的发现相反,本研究中两种鹀的寄生案例极为罕见,没有观察到多次寄生现象。这可能归因于这两种鹀异常强的卵识别能力:即使杜鹃在同一巢穴中产下多个卵,任何先前产下的寄生卵也可能在产卵间隔期间被迅速拒绝,使得杜鹃的繁殖回报远低于其所需的投资。此外,杜鹃在研究区域分布稀少,主要宿主物种的寄生率低于10%(Zhong,2024年);因此,发生多次寄生所需的人口水平条件不足(Goguen等人,2011年;Marton,2021年;Honza等人,2022年)。因此,尽管多次寄生在理论上可能削弱宿主的识别能力,但在本研究的生态背景下,杜鹃通过多次产卵克服这两种鹀的防御机制的可能性很小。
即使一些宿主使用基于模板的机制来识别和区分巢穴中的卵,对其自身卵的印记精度也有限,因为高精度的记忆可能会给宿主带来高能量成本(Dukas,1999年)。Yang等人(2014b)发现,灰喉鹦鹉嘴(Suthora alphonsiana)使用自己的卵作为模板来识别外来卵,因此在没有自己卵的情况下无法识别寄生卵。这意味着宿主对卵的特征印记不完美,宿主使用自己的卵作为模板并与印记的记忆进行比较,从而在实现有效识别的同时降低了记忆成本。然而,当巢穴中与宿主印记模板匹配的卵较少或没有时,宿主可能会接受所有外来卵,即使这些卵的模仿度很低。
在整窝交换实验中,宿主的拒绝率表现出明显的梯度。具体来说,完全不相似的红色模型卵和虎皮鹦鹉卵的拒绝率最高,中等相似的种间卵的拒绝率居中,而同种卵的拒绝率为0%。这一梯度与上述预期一致,即即使宿主使用自己的卵作为模板,随着外来卵的相似度增加,拒绝率也会下降。对于在整窝交换实验中接受了所有外来卵的宿主,当试图通过引入模板“唤起”亲代的印记记忆时,将一个外来卵替换为宿主自身的卵或同种卵,宿主未能成功识别或拒绝外来卵。年龄和经验被认为在宿主卵识别中起作用(Lotem等人,1992年;Molina-Morales等人,2014年;Moskát等人,2014a;Martínez等人,2020年)。Davies(2000年)发现,一些较老的宿主在接受了整窝外来卵后,能够在返回一个自身卵时回忆起模板记忆并准确拒绝所有外来卵,而较年轻的个体往往无法做到这一点。因此,本研究中未能识别外来卵的亲代可能较年轻或繁殖经验较少。
采用基于模板识别的鸟类被认为在出生时或第一次繁殖尝试期间就经历了印记和学习过程,这成为识别和比较巢穴中卵的模板(Lotem等人,1995年;Hauber和Sherman,2001年)。基于此,亲代鸟类可能在每个繁殖周期巩固其对模板的学习和记忆。在本研究中,年龄和繁殖经验可能是导致这两种鹀对自己卵的印记程度不同的因素之一。根据先前的研究,我们认为,当面对一整窝相似的外来卵时,较老、经验更丰富的宿主会识别并拒绝它们。相比之下,繁殖周期较少、经验较少的亲代更有可能将这些卵视为自己的卵进行进一步学习和记忆,将其与旧模板结合创建新的模板。然而,这些现象需要在未来进行进一步的研究,因为在当前的研究中,我们并不知道被测试鸟类的年龄。除了年龄和繁殖经验之外,识别机制之间的相互作用也可能导致亲鸟在换蛋实验中无法准确识别自己的蛋。尽管这两种宿主物种主要依赖于基于模板的识别机制,但蛋的区分过程还辅以一种不一致性识别机制(Rothstein, 1974, 1975; Lyon, 2007; Moskát et al., 2014b; Yang et al., 2014b)。然而,当巢中的外来蛋数量超过宿主蛋的数量,并且宿主蛋与外来蛋之间的差异不足时,这两种机制之间可能会产生冲突,重新引入旧的模板可能会使它们的记忆变得模糊。在这种情况下,一些亲鸟选择接受整个一窝蛋以避免拒绝蛋的成本,一些选择拒绝整个一窝蛋以避免寄生带来的成本,而另一些则通过不一致性识别来拒绝自己的蛋。本研究揭示,随着实验巢中原始蛋窝大小的增加,宿主对外来蛋的拒绝率呈现出显著上升的趋势。这种模式与同种巢寄生情况下观察到的反应相反,在同种巢寄生情况下,蛋窝较小的宿主往往对外来蛋的拒绝概率更高(McRae, 1995; Wang et al., 2013)。这种差异可能源于宿主在种间与同种巢寄生中使用的不同识别机制。面对种间寄生的宿主主要依赖于模板匹配或基于不一致性的蛋特征识别(Rothstein, 1974; Moskát et al., 2014b)。相比之下,同种巢寄生的宿主可能更依赖于计数机制来识别外来蛋。此外,它们的拒绝行为往往伴随着误伤自己蛋或放弃巢穴的风险。因此,当蛋窝大小较大时,拒绝所涉及的潜在成本可能超过接受寄生蛋的成本(Wang et al., 2013)。Osamu等人(2014)的研究指出,在种间巢寄生中,拒绝外来蛋会直接减少巢中的蛋的数量,从而立即导致繁殖损失。因此,随着蛋窝大小的减小,拒绝的相对收益会降低,而当蛋窝大小较大时,这种差异变得更加明显。另一方面,这一趋势也可以从繁殖投资与收益之间的权衡角度来解释。一些研究表明,面对高寄生压力的宿主可能会调整其生活史特征以降低寄生成本——例如,通过减少蛋窝大小来降低风险(Hauber, 2003; Hoover and Reetz, 2006; Boves et al., 2014; Medina and Langmore, 2016)。蛋窝较大的宿主通常投入了更多的资源,面临更大的选择压力,这使得它们更有可能拒绝外来蛋以保护自己的繁殖回报。此外,蛋窝较大的宿主拥有更多的自己蛋作为参考模板,这可能增强它们对自己蛋表型的印记,从而提高区分外来蛋的能力。未来的研究可以量化不同蛋窝大小的宿主的能量分配以及与识别行为相关的成本,以进一步阐明这种权衡机制的具体表现。

我们发现,这两种鹀类宿主对红色模型蛋的拒绝率明显低于对虎皮鹦鹉蛋的拒绝率,而对白色模型蛋的拒绝率高于红色模型蛋(参见Liu et al., 2024; Yan and Liang, 2025),尽管红色模型蛋在材料和颜色上与宿主蛋更为不同。这种差异可能是由于宿主对蛋颜色的感知和反应方式不同所致,这需要进一步研究。另一种可能的解释是模型蛋的材料影响了拒绝率。尽管模型蛋在许多蛋识别研究中被有效使用(Davies and Brooke, 1989; Peer et al., 2002; Ma and Liang, 2021),但它们的材料和质量差异可能导致研究结果出现偏差(Antonov et al., 2009; Yang et al., 2020)。此外,由于鹀类具有圆锥形的喙,上下喙都略微向内弯曲(Ding et al., 2019),它们可能因为模型蛋的材料比真实蛋更硬而难以拒绝。总体而言,这两种鹀类宿主主要采用基于模板的机制来识别外来蛋;然而,随着巢中自己的蛋与外来蛋之间的相似性差异减小,宿主的识别能力趋于下降。由于杜鹃种群密度较低,在研究区域内很少观察到多次寄生现象。因此,尽管这两种鹀类具有相对较强的蛋识别和拒绝能力,并且主要采用基于模板的识别机制,但它们并不是杜鹃的首选或常用宿主。这些发现提供了关于宿主与寄生虫之间关系的见解,以及影响潜在宿主寄生率低下的因素。虽然本研究仅关注潜在宿主以探讨两种鹀类在蛋识别中不同机制的作用,但未来的研究应包括与同域主要宿主种群的比较分析。这样的研究将有助于阐明在不同寄生压力下蛋识别机制的差异,并明确不一致性在不同宿主蛋识别过程中的具体作用。

**作者贡献声明**
魏亮:写作——审稿与编辑、验证、监督、资金获取、概念化。
张宇涵:写作——初稿撰写、可视化、方法论、调查、正式分析、数据管理。
王龙武:写作——审稿与编辑、监督、资源获取、资金获取、概念化。

**未引用的参考文献**
Antonov et al., 2006; AviList Core Team, 2025; Davies and de L Brooke, 1989; Mikami et al., 2015; Yan and Liang, 2024.

**伦理声明**
实验符合中国现行法律。实验程序符合海南师范大学生态与环境教育中心动物研究伦理委员会(编号HNECEE-2012-004)和贵州师范大学实验动物伦理委员会(编号2021001)的规定。

**资金支持**
本工作得到了国家自然科学基金(编号32270526和32470513针对WL,编号32260253针对LW)的支持。

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