受玉米叶蚜(Rhopalosiphum maidis Fitch)侵染的不同小麦品种中的抗氧化酶响应

时间:2025年11月1日
来源:Frontiers in Plant Science

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小麦抗玉米叶粉虱研究显示,65种野生及合成小麦基因型中,合成种和Aegilops kotschyi表现最强抗氧化酶(CAT、APX、POX、GR)及苯丙烷代谢酶(PAL、PPO)活性,而多倍体小麦虽酶活性低但死亡率高,可能依赖非酶防御。研究证实抗虫性由氧化应激调控和次生代谢协同作用,提出利用野生近缘种资源通过分子育种开发环保抗虫小麦品种。

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小麦(*Triticum aestivum* L.)是全球重要的主食作物之一,为近40%的人口提供基本营养(Ahmad et al., 2024;Wei et al., 2022)。它不仅在满足热量需求和消除饥饿方面具有重要意义,还为人类提供蛋白质、碳水化合物和微量元素等关键营养成分。然而,小麦的生产始终受到各种生物和非生物胁迫的威胁,这些胁迫严重影响了产量的稳定性(Ahmad et al., 2022)。在生物胁迫中,昆虫害虫是小麦种植过程中最严峻的挑战之一。蚜虫,尤其是玉米叶蚜(*Rhopalosiphum maidis* Fitch),因其快速繁殖能力、直接吸取植物养分和作为植物病原体传播媒介的特性,对小麦造成严重危害(Jasrotia et al., 2022b)。

玉米叶蚜被广泛认为是危害最严重的谷物蚜虫之一,其分布范围广且适应性强,广泛存在于热带和亚热带地区(Csorba et al., 2024)。这种害虫能够通过吸取植物韧皮汁导致直接产量损失20%至30%,削弱植物、降低光合作用效率并限制籽粒灌浆(Singh and Jasrotia, 2020)。此外,它还能通过传播病毒和真菌病害间接造成5%至80%的产量损失(Aradottir and Crespo-Herrera, 2021)。因此,*R. maidis* 被视为全球小麦生产的主要威胁,特别是在气候条件有利于其繁殖的地区(Yadav et al., 2024)。

目前,蚜虫的管理策略主要依赖于系统性杀虫剂,包括新烟碱类和有机磷类杀虫剂(Devrani et al., 2018;Katare et al., 2021;Kaleem Ullah et al., 2023)。虽然这些杀虫剂在短期内非常有效,但持续、广泛和长期使用却带来了一系列负面影响,例如害虫产生抗药性、蚜虫种群反弹、次生害虫爆发、自然天敌种群受到干扰、土壤和水生态系统受到污染,以及对人类和牲畜的潜在健康风险(Liu et al., 2018;Saroop and Tamchos, 2024)。这些弊端凸显了开发可持续、生态友好的蚜虫管理方法的迫切需求(Araújo et al., 2023)。在替代方案中,寄主植物抗性被认为是极具前景、经济且环保的策略(Jasrotia et al., 2021;Radchenko et al., 2022;Singh et al., 2022)。抗性性状通常与植物的形态学、生化和生理特性相关,这些特性共同决定了植物对害虫攻击的易感性或耐受性(Niraz et al., 1985;Ciepiela, 1989;Smith and Chuang, 2014;Manikanda Boopathi and Shobhana, 2024)。

植物与昆虫的相互作用是长期协同进化的结果,导致复杂的防御和反防御机制。植物会部署构成性和诱导性防御来抵御食草动物(Leitner et al., 2005;Prabhakaran et al., 2025)。构成性防御,如绒毛、角质蜡和预形成的次生代谢产物,无论是否受到胁迫都持续存在(Al-Khayri et al., 2023)。相反,诱导性防御在昆虫攻击后激活,通常涉及由信号通路介导的生化变化(Mostafa et al., 2022)。这些诱导反应高度动态,可能导致有毒或威慑性化合物的合成、结构强化或对主要和次要代谢的改变(Zaynab et al., 2018;Zhang et al., 2022)。

植物对昆虫取食的最早反应之一是产生活性氧物质(ROS),包括过氧化氢(H₂O₂)、超氧阴离子(O₂⁻)和羟基自由基(OH)(Dhiman et al., 2025)。尽管ROS作为重要的信号分子,但其过度积累会导致氧化应激,进而损害脂质、蛋白质和核酸(Xie et al., 2016;El-Zohri et al., 2020)。为了减轻这种损害,植物激活了抗氧化防御系统,包括酶和非酶成分。非酶成分包括酚类化合物、黄酮类、单宁和生物碱,这些物质能威慑食草动物并干扰其生理(Debona et al., 2012;Smith and Clement, 2012;Raza et al., 2021;Dash et al., 2025)。酶系统包括关键的氧化酶,如过氧化物酶(POX/POD)、多酚氧化酶(PPO)、苯丙氨酸氨裂解酶(PAL)和过氧化氢酶(CAT),这些酶能清除ROS并促进防御性次生代谢产物的生物合成(Taggar et al., 2012;Sha et al., 2015)。

过氧化物酶(POX/POD)在植物防御中具有双重作用,既参与木质素形成和亚麻酸化,增强细胞壁对昆虫穿透的抵抗力,又通过清除ROS提高氧化应激耐受性(Usha Rani and Jyothsna, 2010)。多酚氧化酶(PPO)则催化酚类化合物氧化为醌类,这些醌类可能聚合形成保护屏障或干扰昆虫消化。在多种作物中,包括高粱和小麦,都观察到蚜虫侵染后PPO活性增加(Chang et al., 2008)。PAL是苯丙烷途径的关键酶,将L-苯丙氨酸转化为对-香豆酸,这是多种酚类化合物和植物抗毒素(phytoalexins)的前体,参与防御(Dixon et al., 2002;Chaman et al., 2003)。在棉花叶片受到*Aphis gossypii*攻击和小麦受到*Sitobion avenae*侵染时,已记录到PAL活性升高,且抗性品种的PAL活性始终高于易感品种(Li et al., 2008;Han et al., 2009;Xu et al., 2021)。因此,这些酶被广泛认为是昆虫抗性的生化标志。同样,蚜虫取食会触发小麦中抗氧化和防御相关酶的显著诱导,强调了它们在食草耐受性中的关键作用。不同品种的酶活性差异表明了防御能力的多样性,一些品种在特定条件下表现出较低的易感性(Kaur et al., 2017)。

除了酶活性变化,蚜虫侵染还影响植物次生代谢物的积累、营养分配和结构特性。抗性小麦品种通常表现出较高的酚类物质含量、改变的碳水化合物组成以及更强的结构屏障,如增加的叶片厚度和绒毛密度(Kessler et al., 2004;Demis, 2024)。这些特征与生化防御协同作用,减少蚜虫的取食效率、消化和繁殖。然而,蚜虫也进化出适应性机制,包括唾液效应因子,这些因子可以抑制植物防御信号,并操纵宿主代谢以增强营养可利用性(Zaynab et al., 2018)。这种进化博弈使得了解不仅静态的防御性状,还包括在害虫侵染过程中发生的动态生化反应变得尤为重要。

尽管在理解植物与蚜虫相互作用方面取得了显著进展,但关于小麦对*R. maidis*的生化基础的研究仍存在关键空白。虽然已有研究报道了在蚜虫侵染下不同作物中酶活性增强,但关于小麦中抗氧化酶和次生代谢物的时空变化信息仍然有限(Xu et al., 2021;Zhang et al., 2022;Guan et al., 2022)。此外,关于抗性和易感性小麦品种之间的反应差异,特别是来自野生和合成背景的品种,仍知之甚少。小麦的野生近缘种已知富含多样化的抗性基因和生化特性,使其成为扩展栽培小麦抗性遗传基础的重要资源。

因此,本研究设计了以下目标:i)评估小麦品种在蚜虫胁迫下的生化反应,重点关注过氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)和苯丙氨酸氨裂解酶(PAL)等抗氧化酶;ii)比较抗性和易感品种之间的反应差异,包括野生和合成小麦;iii)识别可能作为*R. maidis*抗性指标的关键生化标记。这些生化互动的理解不仅有助于深化我们对植物防御机制的认识,还能为通过传统和分子方法培育持久的抗蚜小麦品种提供有价值的见解。

在本研究中,共评估了65个野生和合成小麦品种,以确定其生化特性。这些品种包括七种小麦物种,如*Aegilops tauschii*、*Ae. kotschyi*、*Ae. ovata*、*Ae. peregrina*、合成小麦、双倍体和*Triticum dicoccoides*。通过将植物置于两种条件下:未受蚜虫侵染(对照)和受蚜虫侵染(侵染),研究了这些品种的生化反应。小麦品种被种植在1米的行中,株距30厘米,采用随机区组设计(RBD),三个重复(每重复两行)。实验在温室中进行,温室温度维持在15°C至20°C之间,相对湿度在60%至70%之间,并使用自然光。

在未受蚜虫侵染的对照条件下,植物用网罩保护,以防止昆虫攻击。在受蚜虫侵染的条件下,植物同样用网罩覆盖(50目),但故意侵染蚜虫。为了评估每个小麦品种上的蚜虫死亡率,从已建立的玉米叶蚜种群中释放200只*R. maidis*若虫到15天大的幼苗上,使用柔软的毛刷。幼苗随后被放入网笼中以保持均匀的选择压力。24小时后,记录了在植物上定居的若虫数量,并移除所有未定居的个体。死亡率通过计算定居群体中死亡蚜虫的数量并以百分比形式表达,每个基因型的平均死亡率用于确定物种层面的死亡率,而存活若虫数量则用于进一步验证死亡率估计。之后,使用剪刀在清晨从受蚜虫侵染和未受蚜虫侵染的植物上采集旗叶样本。样本被存放在冰块的保温箱中,并在冰箱中保存在-20°C下。按照标准协议进行生化参数的估算。

为了估算抗氧化酶的活性,包括过氧化氢酶(CAT)、抗坏血酸过氧化物酶(APX)、过氧化物酶(POX)和谷胱甘肽还原酶(GR),0.5克叶组织在冰上研磨,使用5.0毫升100 mM磷酸钾缓冲液(pH 7.0)。然后将匀浆离心20分钟,15,000×g。所得的上清液(粗蛋白提取物)用于测定酶活性。

在本研究中,玉米叶蚜若虫的死亡率在不同野生和合成小麦品种中表现出显著差异(Ahmad et al., 2024;Wei et al., 2022)。死亡率从*Ae. kotschyi*的3774a品种的31.99% ± 0.22%到最抗性品种EC 787008的75.32% ± 1.02%。在测试的物种中,双倍体小麦表现出最高的若虫死亡率(72.56% ± 2.88%),显著高于其他所有物种组,除了*Ae. ovata*,其死亡率为63.84% ± 2.37%。*T. dicoccoides*也表现出相对较高的死亡率,其平均死亡率为52.94% ± 3.44%,随后是*Ae. tauschii*(52.46% ± 11.66%)和*Ae. peregrina*(45.41% ± 7.37%),这些物种表现出中等水平的抗性。合成小麦整体表现出相对较低的死亡率(39.75% ± 6.92%),而*Ae. kotschyi*的死亡率最低,为32.73% ± 1.04%。观察到每个物种组内的个体差异显著。例如,在*Ae. tauschii*中,14325b品种表现出最高的死亡率(74.91% ± 1.05%),而3784a品种表现出最低的死亡率(33.12% ± 0.14%)。*Ae. peregrina*的个体也表现出中等但差异显著的效果,其中PI 604145b品种表现出最低的蚜虫死亡率(36.34% ± 0.51%),而PI 604176b品种则表现出最高的死亡率(59.72% ± 0.06%)。总体均值比较确认了不同小麦物种间的显著差异。这表明,抗*R. maidis*的能力与物种相关,并且在个体间也存在差异。这些结果突显了野生近缘种,特别是双倍体、*Ae. ovata*、*Ae. peregrina*和*Ae. tauschii*的某些个体,作为对抗*R. maidis*的宝贵遗传资源的潜力。

在*R. maidis*侵染下,CAT活性在不同野生和合成小麦物种的旗叶中表现出显著差异。这种差异表明,不同物种对氧化应激的管理策略存在差异。合成小麦表现出最高的CAT活性,控制条件下为47.52 ± 0.34 µmol/min/g FW,侵染条件下增加至51.19 ± 0.19 µmol/min/g FW,显著高于其他所有物种。*Aegilops kotschyi*和*Ae. ovata*也表现出相对较高的CAT活性,分别在控制条件下为32.26 ± 0.55和28.55 ± 0.27 µmol/min/g FW,侵染条件下增加至34.58 ± 0.77和31.09 ± 0.21 µmol/min/g FW,这些数值显著高于其他物种。*Ae. tauschii*和*Ae. peregrina*表现出中等的CAT活性,分别在控制条件下为22.71 ± 0.13和21.97 ± 0.35 µmol/min/g FW,侵染条件下增加至24.81 ± 0.13和23.64 ± 0.15 µmol/min/g FW。同时,*T. dicoccoides*表现出稍低的CAT活性,控制条件下为19.99 ± 0.25,侵染条件下为22.20 ± 0.28 µmol/min/g FW。而双倍体小麦的CAT活性最低,控制条件下为18.46 ± 0.44,侵染条件下为20.29 ± 0.31 µmol/min/g FW,显著低于其他物种组。统计分组表明,在控制和侵染条件下,不同物种的CAT活性存在显著差异,合成小麦与双倍体小麦形成明显对比。观察还表明,蚜虫侵染普遍诱导CAT活性,但诱导程度因小麦物种而异。这些发现表明,抗氧化防御反应,如CAT活性,是在不同小麦物种中差异调节的。合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. ovata*在蚜虫攻击下表现出更强的氧化应激耐受机制,而双倍体和*T. dicoccoides*则表现出较弱的反应。

在*R. maidis*侵染下,APX活性在不同小麦物种的旗叶中表现出显著差异。这种差异表明,不同物种对氧化应激的管理能力存在差异。合成小麦表现出最高的APX活性,控制条件下为56.19 ± 0.85单位/分钟/克鲜重(FW),侵染条件下增加至62.60 ± 0.24单位/分钟/克FW,显著高于其他所有物种。*Aegilops kotschyi*和*Ae. ovata*也表现出较高的APX活性,分别在控制条件下为48.32 ± 0.15和46.85 ± 0.34单位/分钟/克FW,侵染条件下增加至53.68 ± 1.30和50.98 ± 0.45单位/分钟/克FW。*Ae. peregrina*表现出中等的APX活性,从37.93 ± 0.08(控制条件)增加到40.82 ± 0.08单位/分钟/克FW(侵染条件)。同时,*T. dicoccoides*表现出相对较低的APX活性,从36.25 ± 1.04(控制条件)增加到38.57 ± 0.63单位/分钟/克FW(侵染条件)。*Ae. tauschii*表现出稍低的APX活性,从32.65 ± 0.15增加到36.20 ± 0.30单位/分钟/克FW。而双倍体小麦的APX活性最低,控制条件下为31.28 ± 0.22单位/分钟/克FW,侵染条件下为35.21 ± 0.59单位/分钟/克FW。统计比较表明,合成小麦在APX活性上显著高于所有其他物种,而双倍体小麦则始终记录最低的水平。观察还表明,蚜虫侵染普遍提升了APX活性,但提升的程度因物种而异。这些发现表明,增强的APX活性是应对*R. maidis*侵染的关键氧化应激反应,合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. ovata*表现出更强的抗氧化防御机制,而双倍体和*Ae. tauschii*则表现出最弱的反应。

在*R. maidis*侵染下,POX活性在不同小麦物种的旗叶中表现出显著差异。这种差异表明,不同物种对氧化应激的管理策略存在差异。合成小麦表现出最高的POX活性,控制条件下为48.93 ± 单位/分钟/克FW,侵染条件下增加至54.76 ± 单位/分钟/克FW,显著高于其他所有物种。*Aegilops kotschyi*也表现出较高的POX活性,从36.70 ± 0.72增加到40.65 ± 0.41单位/分钟/克FW。*Ae. ovata*的POX活性在控制条件下为34.83 ± 0.12,侵染条件下增加至39.29 ± 0.41单位/分钟/克FW。*Ae. tauschii*和*Ae. peregrina*表现出中等的POX活性,分别从30.18 ± 0.06增加到34.28 ± 0.07单位/分钟/克FW和从25.79 ± 0.20增加到29.55 ± 0.13单位/分钟/克FW。同时,*T. dicoccoides*表现出相对较低的POX活性,控制条件下为23.06 ± 0.32,侵染条件下增加至26.91 ± 0.31单位/分钟/克FW。双倍体小麦的POX活性最低,控制条件下为21.26 ± 0.30单位/分钟/克FW,侵染条件下为24.42 ± 0.37单位/分钟/克FW。统计比较表明,合成小麦在POX活性上显著高于其他物种,而双倍体小麦始终记录最低的水平。观察还表明,蚜虫侵染普遍提升了POX活性,但提升的程度因物种而异。这些结果表明,合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. ovata*具有更强的过氧化物酶为基础的抗氧化防御,可能赋予其对*R. maidis*侵染的更强耐受性。相比之下,双倍体和*T. dicoccoides*表现出较弱的反应,表明其在氧化应激耐受性方面的局限性。

在*R. maidis*侵染下,GR活性在不同小麦物种的旗叶中表现出显著差异。这种差异表明,不同物种对氧化应激的管理能力存在差异。合成小麦表现出最高的GR活性,控制条件下为63.02 ± 0.41 nmol NADP⁺形成的/min/g FW,侵染条件下增加至66.82 ± 1.67 nmol NADP⁺形成的/min/g FW,显著高于其他所有物种。*Aegilops kotschyi*也表现出较高的GR活性,从57.21 ± 1.01增加到60.34 ± 1.70 nmol NADP⁺形成的/min/g FW。*Ae. ovata*的GR活性在控制条件下为52.41 ± 1.31,侵染条件下增加至54.65 ± 0.93 nmol NADP⁺形成的/min/g FW。*Ae. tauschii*、*Ae. peregrina*和*T. dicoccoides*表现出中等的GR活性,分别从34.03 ± 0.17增加到38.60 ± 0.15 nmol NADP⁺形成的/min/g FW、从35.03 ± 0.20增加到39.53 ± 0.25 nmol NADP⁺形成的/min/g FW,以及从35.71 ± 0.39增加到38.12 ± 0.20 nmol NADP⁺形成的/min/g FW。双倍体小麦的GR活性最低,控制条件下为26.48 ± 0.36 nmol NADP⁺形成的/min/g FW,侵染条件下为30.03 ± 0.10 nmol NADP⁺形成的/min/g FW。统计比较表明,合成小麦始终表现出最高的GR活性,显著高于其他物种,而双倍体小麦则始终记录最低的水平。观察还表明,蚜虫侵染普遍提升了GR活性,但提升的程度因物种而异。这些发现表明,合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. ovata*表现出更强的谷胱甘肽还原酶为基础的抗氧化反应,这可能有助于增强其对*R. maidis*的耐受性。相比之下,双倍体和*T. dicoccoides*表现出较弱的反应,表明其在激活GR防御机制方面的效率较低。

在*R. maidis*侵染下,PAL活性在不同小麦物种的旗叶中表现出显著差异。这种差异表明,不同物种对氧化应激的管理能力存在差异。合成小麦表现出最高的PAL活性,控制条件下为729.25 ± 9.21 µg对-香豆酸形成的/h/g FW,侵染条件下增加至748.05 ± 8.66 µg对-香豆酸形成的/h/g FW,显著高于其他所有物种。*Aegilops kotschyi*也表现出较高的PAL活性,从631.18 ± 10.47增加到657.96 ± 3.72 µg对-香豆酸形成的/h/g FW。*Ae. tauschii*的PAL活性在控制条件下为591.15 ± 2.26,侵染条件下增加至624.05 ± 2.25 µg对-香豆酸形成的/h/g FW。*Ae. ovata*的PAL活性在控制条件下为545.62 ± 5.70,侵染条件下增加至564.29 ± 11.63 µg对-香豆酸形成的/h/g FW。*Ae. peregrina*表现出中等的PAL活性,从452.43 ± 增加到496.00 ± µg对-香豆酸形成的/h/g FW。*T. dicoccoides*的PAL活性在控制条件下为445.36 ± 5.14,侵染条件下增加至472.16 ± 4.13 µg对-香豆酸形成的/h/g FW。双倍体小麦的PAL活性最低,控制条件下为382.84 ± 6.01 µg对-香豆酸形成的/h/g FW,侵染条件下为415.55 ± 10.37 µg对-香豆酸形成的/h/g FW。统计比较表明,合成小麦和*Ae. kotschyi*在PAL活性上显著高于其他物种,而双倍体小麦始终记录最低的活性。蚜虫侵染在所有物种中均诱导PAL活性,但诱导程度因物种而异。这些结果表明,合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. tauschii*在*R. maidis*攻击下表现出更强的苯丙烷途径激活,暗示其更强的防御能力,而双倍体和*T. dicoccoides*则表现出较弱的反应。

主成分分析(PCA)显示,六个主成分中只有第一个主成分(PC1)的特征值大于1,解释了总变异的67.43%(补充表S2)。PCA图表明,PC1单独解释了67.43%的变异,而PC2和PC3分别解释了13.82%和9.69%的变异(图8A)。酶活性与PC1之间表现出强烈的负相关,而PAL和PPO活性与PC1之间则表现出较弱的负相关(图8B)。在PCA双图中,所有小麦品种的酶活性都得到了表示。虚线和实线分别代表不同小麦品种在*R. maidis*侵染和未受侵染条件下的聚类。PC1和PC2的长度和方向表明了酶活性与主成分之间的相关性。这些结果表明,合成小麦、*Ae. kotschyi*和*Ae. ovata*表现出更强的PPO介导的生化防御,而双倍体和*T. dicoccoides*则表现出较弱的防御反应。

本研究的结果清楚地表明,小麦品种在抵抗*R. maidis*的生化防御反应上存在显著的多样性。野生和合成小麦品种在玉米叶蚜侵染下表现出差异的生化反应,这在抗氧化酶活性和蚜虫诱导死亡率的变化中得到了体现。抗性品种如双倍体小麦和*Ae. kotschyi*表现出较高的蚜虫死亡率,同时所有物种的抗氧化酶活性均显著增强,这突显了寄主-蚜虫相互作用的多面性。这些发现强调,小麦对*R. maidis*的防御依赖于构成性抗性和诱导性生化反应的结合,其中氧化应激管理与苯丙烷代谢是核心成分,如在不同小麦物种和基因型中观察到的显著差异。

抗氧化酶如CAT、APX、POX和GR的增强活性突显了它们在减轻蚜虫诱导的氧化损伤中的核心作用。此外,苯丙烷途径的激活有助于结构和化学防御的加强。合成小麦和*Ae. kotschyi*因其强大的酶反应而成为有价值的遗传资源,表现出对*R. maidis*的显著抗性潜力。相比之下,双倍体小麦尽管表现出较低的酶诱导,但表现出显著的蚜虫死亡率,这表明其可能具有独特的非酶性或次生代谢物为基础的防御机制,这些机制同样重要,塑造了抗性。这些发现强调了利用多样化的遗传资源以捕捉互补的抗性策略的重要性。通过先进的育种方法,包括标记辅助育种和分子育种,整合酶和非酶抗性因素提供了一条培育持久、广谱和环保的抗蚜小麦品种的可行途径。这些进展不仅有助于可持续的作物保护和减少杀虫剂依赖,还能增强小麦种植在变化的害虫动态和气候条件下的韧性。

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