联合抗体偶联药物与免疫刺激抗体偶联物通过增强癌胚抗原内化及STING通路激活以最大化抗癌疗效

时间:2026年1月8日
来源:Molecular Oncology

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本综述创新性地提出将抗体偶联药物(ADC)与免疫刺激抗体偶联物(ISAC)联合使用,以克服癌胚抗原(CEA)等肿瘤相关抗原内化缓慢的难题。研究采用两种非竞争性抗CEA抗体(hMN14与M5a),分别搭载细胞毒性载荷SN-38和STING激动剂,通过抗体交叉连接增强癌细胞内吞,并利用工程化Fc结构域提升ISAC对免疫细胞的靶向性。临床前研究表明,该联合疗法在免疫缺陷鼠模型中显著抑制肿瘤生长(第14天联合组肿瘤体积仅为ADC组的~40%),并诱导CD45+免疫细胞浸润,为治疗免疫"冷"肿瘤提供了新策略。

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引言
抗体偶联药物(ADC)通过特异性靶向肿瘤相关抗原并递送细胞毒性载荷,已成为重要的抗癌疗法。然而,由于肿瘤渗透不足、受体下调等因素导致的耐药性限制了其疗效。联合免疫疗法(如检查点抑制剂)虽能增强反应,但对免疫"冷"肿瘤效果有限。本研究提出将ADC与免疫刺激抗体偶联物(ISAC)联用,通过双特异性抗体策略同步激活癌细胞杀伤与先天免疫应答。
材料与方法
  • 抗体设计:选用靶向CEA不同表位的两种抗体——hMN14(Ab1,结合A3B3结构域)和M5a(Ab2,结合A3结构域),经验证为非竞争性结合。Ab2的Fc区域引入L235V、F243L等突变(Ab2*)以增强Fcγ受体(FcγR)结合能力。
  • 偶联物制备:Ab1与拓扑异构酶I抑制剂SN-38偶联为ADC(DAR8);Ab2*与STING激动剂(基于CL656类似物)偶联为ISAC(DAR6)。结合亲和力与内化实验证实偶联不影响抗体功能。
  • 体外实验:采用CAPAN-1(高表达CEA的胰腺癌细胞)与免疫细胞共培养模型,评估抗体内化、ADCC活性及STING通路激活(THP-1 IRF报告基因检测)。
  • 体内实验:在免疫缺陷(Foxn1nu)小鼠CAPAN-1移植瘤模型中,分组单次或联合注射ADC(10 mg·kg−1)与ISAC(10 mg·kg−1),监测肿瘤体积、体重变化及肿瘤组织CD45+细胞浸润。
结果
  1. 1.
    抗体特性验证:Ab1与Ab2可非竞争性结合CEA(EC50分别为1.26 nM和0.67 nM)。Ab2*的Fc增强突变使其ADCC活性提升至60倍(IC50=0.19 nM),且与Ab1联用后活性仍高于Ab2单用。
  2. 2.
    细胞特异性内化:共培养实验显示Ab2更易被巨噬细胞内化,而Ab1主要被癌细胞摄取。抗体混合后,Ab2的免疫细胞内化受Ab1的Fc竞争性抑制,但癌细胞对Ab1的内化未受影响。
  3. 3.
    ISAC功能验证:Ab2*-STINGa(DAR6)在共培养体系中激活STING通路达45.3倍,且靶向性显著(有/无癌细胞活性比7.1)。ISAC本身对CAPAN-1无直接毒性。
  4. 4.
    体内协同抗肿瘤效果:联合治疗组在第14天肿瘤体积降至ADC组的40%,且唯一出现肿瘤缩小。组织学分析显示联合组CD45+细胞浸润达38%,并伴中央坏死,表明免疫激活与细胞毒性协同作用。
  5. 5.
    安全性:联合治疗组首次给药后体重下降约7%,但二次给药后恢复,耐受性与单药相当。
讨论
本研究通过ADC与ISAC的协同设计,实现了以下突破:
  • 双靶向内化:非竞争性抗体促进CEA聚类,加速ADC的癌细胞摄入;
  • 免疫靶向优化:Ab2*的Fc工程化提升ISAC的免疫细胞递送效率;
  • 疗效与安全性平衡:采用中效STING激动剂支持高剂量给药(10 mg·kg−1),与临床ADC剂量匹配。
    局限性包括免疫缺陷模型无法评估适应性免疫,且Ab1的Fc可能竞争性抑制ISAC活性。未来需在免疫健全模型中优化Fc设计(如ADC采用Fc沉默突变)。
结论
ADC与ISAC联合疗法通过空间位点协同与Fc功能差异化设计,显著增强了对CEA阳性肿瘤的抑制作用,为改善免疫"冷"肿瘤疗效提供了可转化策略。

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