PH0140蛋白的序列比对、克隆、表达和纯化
PH0140蛋白的序列来自Pyrococcus horikoshii OT3,从UniProtKB数据库(访问号:O57880)中获取[17]。使用BlastP搜索非冗余蛋白质序列,识别出不同生物体中的同源蛋白,有助于蛋白质家族的分类[18]。使用ClustalW序列比对网站分析这些同源蛋白之间的序列相似性和氨基酸组成[19]。结构相似性通过EsPript软件展示
数据收集
X射线衍射实验使用的是内部X射线旋转阳极衍射仪(SuperBright波长CuKα,1.54 Å;CrKα,2.29 Å),在新德里的国家免疫学研究所进行。用尼龙环快速将单晶取出,浸入冷冻保护溶液中,然后安装在液氮流冷却下的测角仪头上,温度为100 K。冷冻保护溶液由25 µl 100%乙二醇和75 µl储液组成
PH0140蛋白的结构确定、精修、模型构建和验证
利用Pyrococcus horikoshii OT3中的PH1519(PDB ID:2CYY)的晶体结构,通过分子替换法确定了PH0140的晶体结构,两者具有38%的序列同源性。使用CCP4-Phaser程序进行结构精修,得到一个不对称单元中的单个分子模型。该模型经过50轮刚性体精修,随后进行100轮基于最大似然的坐标精修
尺寸排阻色谱
通常情况下,PH0140蛋白的同源物在外源性氨基酸存在下会形成更高阶的寡聚体。在此实验中,使用含有20 mM Tris(pH 7.0)、50 mM NaCl和4 mM DTT(二硫苏糖醇)的缓冲液平衡色谱柱。将PH0140蛋白(2 mg/ml)以及外源性氨基酸异亮氨酸和色氨酸(5 mM)孵育30分钟后,加载到预平衡的色谱柱中,通过尺寸排阻色谱法研究蛋白质的寡聚体形成
等温滴定量热(ITC)分析
等温滴定量热(ITC)可以准确测量蛋白质-配体相互作用建立过程中释放/吸收的热量,以及解离/结合常数(Kd/Ka)、焓(ΔH)、熵(ΔS)、反应化学计量(n)和蛋白质-配体复合物的结合自由能(ΔG)等热力学参数[29]。在ITC实验前,所有样品都经过过滤和脱气处理。实验中使用的PH0140浓度为100 µM(在50 mM Tris pH 8.0和50 mM NaCl溶液中)
电泳迁移率测定(EMSA)
对于DNA结合实验,将纯化的蛋白质与20-bp双链DNA探针孵育,该探针由5′-FAM标记的前导寡核苷酸与其未标记的互补链组成。EMSA反应在最终体积为20 μL的缓冲液中进行,缓冲液含有10 mM Tris(pH 7.5)、50 mM NaCl、1 mM DTT和5%甘油以及0.05 mg/mL BSA,蛋白质浓度范围为1 μM至5 μM。反应在25 °C下孵育超过30分钟
CRediT作者贡献声明
理查德·马里亚达塞(Richard Mariadasse):撰写 – 审稿与编辑、初稿撰写、验证、方法学研究、数据管理、概念构思。穆罕默德·艾哈迈德(Mohammed Ahmad):可视化处理、验证、正式分析、数据管理。拉维·坎特·帕尔(Ravi Kant Pal):验证、正式分析。科希拉·古鲁纳坦(Kohila Gurunathan):方法学研究、正式分析。斯内哈·苏布拉马尼安(Sneha Subramaniyan):方法学研究、正式分析。比奇特拉·K·比斯瓦尔(Bichitra K. Biswal):撰写 – 审稿与编辑、验证、监督。苏雷什·库马尔·穆图维尔(Suresh Kumar Muthuvel):撰写 – 审稿与编辑
伦理批准和参与同意
不适用
数据和材料的可用性
蛋白质结构已存储在蛋白质数据库中,PBD ID为7FBY(PDB DOI:10.2210/pdb7FBY/pdb)。本研究生成的所有数据集均包含在文章/补充材料中。
作者贡献
R.M负责整个研究的設計和实施。RKP和MA负责数据收集、处理和结构解析。KG和SS负责蛋白质纯化,BKB、SKM和ST分别指导他们的研究工作。
利益冲突声明
作者声明他们没有已知的财务或个人利益冲突,这些冲突可能会影响本研究的结果。
致谢
JJ衷心感谢生物技术-生物信息学中心(BIC)-No.BT/PR40154/BTIS/137/2021、DBT-NNP-No.BT/PR40156/BTIS/137/54/2023、TANSCHE(文件编号RGP/2019-20/ALU/HECP-0049)以及DST Indo-Taiwan(GITA/DST/TWN/P-86/2019)通过重大研究项目提供的财政支持。作者还感谢DST-FIST(SR/FST/LSI-667/2016,新德里)提供的基础设施支持。作者同时感谢新德里科学技术部的支持