综述:从出芽酵母到人类的NMD因子保守相互作用的生化机制研究

时间:2026年3月11日
来源:Journal of Molecular Biology

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NMD通过降解含有提前终止密码子的异常mRNA调控真核生物的转录稳定性,核心组分Upf1参与形成两种互斥复合体:Upf1-23复合体和Upf1-去帽复合体,两者通过蛋白相互作用网络动态调控mRNA降解过程,机制在酵母和人类中高度保守。

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Nadia Ruiz-Gutierrez|Marc Graille|Hervé le Hir|Cosmin Saveanu
法国巴黎高等师范学院生物研究所(IBENS),高等师范学院,法国国家科学研究中心(CNRS),法国国家健康与医学研究院(INSERM),PSL研究大学,乌尔姆街46号,75005

摘要

无义介导的mRNA降解(NMD)是细胞质中mRNA降解途径中最受广泛研究的机制之一。它通过清除含有过早终止密码子的异常转录本以及调节生理mRNA的稳定性,在多种细胞过程中发挥着关键作用。NMD因子最初是通过在S. cerevisiaeUPF123)和C. elegans(SMG-1、SMG5-7)中的遗传筛选发现的。随后的生化和遗传学研究揭示了NMD复合物的组成,并发现了其他相关因子。NMD的主要蛋白中心是Upf1,这是一种依赖ATP的RNA解旋酶,它属于两个互斥的NMD复合体:Upf1-Upf2-Upf3复合体和Upf1-去帽复合体,后者包含去帽酶及其辅因子。本文讨论了最近关于驱动NMD复合体动态的蛋白质-蛋白质相互作用的研究结果,尤其是来自出芽酵母的研究,以及这些相互作用与人类NMD的相似性。Upf1的N端富含半胱氨酸和组氨酸的域(CH域)以及解旋酶域(HD域)共同作为结合多个伴侣的枢纽。Upf1对于与NMD底物结合以及通过去帽作用(在酵母中)或内切核酸水解(在人类中)启动RNA降解是必需的。我们重点关注Upf2、Dcp2和Nmd4(酵母中的SMG6)之间的相互作用,这种相互作用确保了形成互斥的Upf1结合亚复合体,从而调节Upf1对RNA的亲和力。因此,研究不同生物体中的NMD因子相互作用有助于揭示NMD分子机制的显著保守性。

引言

无义介导的mRNA降解(NMD)是一种在从酵母到人类的真核生物中都存在的RNA降解途径。该途径的大多数RNA靶标都含有过早翻译终止密码子(PTC),只有在被翻译后才能被降解。例如,逃过核检查点的非编码RNA在细胞质中被翻译,而这些非编码RNA恰恰是一些最佳的NMD靶标。只有成功输出到细胞质的RNA才是NMD的底物,这一点可以通过核RNA输出因子Dbp2在酵母中诱导特定非编码RNA通过NMD降解的能力来说明[117]、[21]。
除了到达细胞质的非编码RNA外,其他NMD靶标还包括5'非翻译区(UTR)中含有短开放阅读框(ORF)的mRNA、因突变而产生终止密码子的mRNA,以及含有终止密码子的不完全或可变剪接的mRNA。NMD的生理靶标包括那些其不稳定性有助于控制相应蛋白质产物短暂作用的mRNA,例如在发育过程中重要的GADD45B转录因子[84]。在某些情况下,NMD对于避免免疫球蛋白和免疫受体在程序性重组过程中产生的蛋白质片段的毒性至关重要(例如[55])。在病理学中重要的NMD靶标还包括病毒RNA和癌细胞产生的异常RNA(综述见[61])。许多单基因疾病也是由于突变导致PTC的出现和蛋白质功能丧失而引起的(综述见[115])。总体而言,NMD是一种对多种细胞过程至关重要的监督途径。
关于NMD机制及其在健康和疾病中的重要性的综述文献非常丰富。在PubMed上搜索“NMD AND RNA”可以找到过去5年中的至少86篇综述文章,这表明了NMD研究的活跃程度以及人们对NMD在生物学和健康中作用的日益关注。最近的综述关注了NMD在神经发育中的作用[108]、哺乳动物NMD的结构方面[75]、NMD作为细胞抗病毒防御的重要性[95]、[77],或者影响NMD的潜在治疗用途[78]。NMD因子的进化过程也已有研究[70]、[12],另一篇综述则聚焦于非编码RNA形成背景下的酵母NMD机制[3]。最后,关于哺乳动物因子的综述包括NMD对其他mRNA降解途径的重要性,可参考[65]。
为了区分本文中提到的不同生物体和NMD因子,我们对酵母蛋白使用小写名称(如Upf1),而对其他生物体的蛋白名称则使用全大写形式(如UPF1)。斜体大写名称用于表示酵母基因名称(UPF1),而小写名称则代表酵母突变等位基因(upf1Δ)。
尽管关于NMD机制的知识已经积累了几十年,但最近的研究对过去的观点提出了质疑。例如,核心NMD蛋白UPF1曾被认为在Staufen介导的mRNA降解中起重要作用[62],但最近的一项研究未能验证degron系统中UPF1缺失与Staufen1结合的mRNA降解之间的联系[10]。UPF1的mRNP重塑活性[30]也受到质疑,因为发现体外影响UPF1 RNA相关特征的点突变并不一定导致体内NMD功能的丧失[15]。与哺乳动物细胞的结果类似,体外对RNA结合能力较低的突变酵母Upf1无法支持NMD,但这种情况仅发生在缺乏该蛋白的N端结构域时[59]。另一项经常被引用的研究将NMD中的mRNA降解与后生动物中脱腺苷酸化的加速联系起来[71],但基于Nanopore测序的方法在C. elegans中并未找到这一假设的任何大规模证据[114]。此外,之前被认为对脱腺苷酸化重要的因子实际上有助于内切核酸水解[9]。这些结果也与发现加速的脱腺苷酸化不太可能是出芽酵母[6]、裂殖酵母[98]、C. elegans [69]或A. thaliana [56]中快速mRNA降解的原因一致。关于蛋白质相互作用,UPF1的磷酸化曾被认为对其结合内切核酸酶SMG6至关重要[89],但后来发现存在不依赖于磷酸化的相互作用[87],这种相互作用在出芽酵母的SMG6等同物中也得到了验证[25]、[7]。最后,我们的最新研究表明,Upf1可以特异性结合寡腺苷酸化的mRNA,而这些mRNA此前并未被视为NMD的靶标[39]。这些例子表明我们对NMD的认识仍然存在不足,预示着还有许多关于该真核生物RNA降解途径的分子机制及其广泛底物的未知之处有待发现。
这篇综述从出芽酵母研究的视角更新了NMD机制,特别是NMD因子之间的蛋白质-蛋白质相互作用及其与后生动物相互作用网络的相似性。尽管这条途径已经研究了30多年,但今天仍能发现其新的特征,这令人兴奋。最近在RNA降解领域,尤其是在NMD方面的研究结果表明,新的发现为之前的假设提供了新的见解或对其进行了更新。我们同意一项关于特定基因等位基因与疾病关联的大规模研究的作者观点:“……这项工作强调了RNA稳定性作为一个关键但研究不足的机制,它将遗传变异与疾病联系起来。”
NMD是一种在真核生物中保守的途径,它塑造了转录组,促进了新基因的进化,限制了病毒的复制,并与复杂生物体发育过程中的基因表达调控密切相关。虽然核心NMD成分(如RNA解旋酶Upf1)在真核生物中是保守的,但进化导致了蛋白质相互作用网络的重组,使得不同生物体以非常相似的方式招募负责不同模式mRNA降解的特定因子。在某些生物体中,如S. cerevisiae,mRNA降解的主要机制是通过激活Dcp2酶进行去帽[46]。在D. melanogaster中,NMD底物通过SMG6[33]与SMG5和SMG7[9]、[63]、[81]、[4]的共同作用被降解。尽管存在这些表面差异,我们最近发现出芽酵母中也存在SMG6的等同物,它在NMD机制中发挥保守的非催化作用,并通过一种在人类细胞中保守的分子机制与Upf1相互作用[7]。因此,研究不同进化物种中的NMD对于理解NMD机制至关重要。
这篇综述将讨论几种已知能与Upf1形成亚复合体或单独相互作用的蛋白质(见图1)。第一组包括核心NMD因子Upf2和Upf3。第二组亚复合体包含Nmd4和Ebs1,它们分别是SMG6和SMG5/SMG7的酵母同源物。第三组与Upf1相互作用的蛋白质包括去帽酶Dcp2及其伴侣Dcp1、Edc3和外切核酸酶Xrn1。由于新的研究数据扩展了我们对这些蛋白质在NMD中相互作用的理解,因此综述仅限于这些蛋白质。

哺乳动物和酵母NMD之间的差异与相似性

NMD需要区分过早终止密码子和“真正”的终止密码子,以便招募Upf和诱导降解的因子。在酵母NMD中,主要的RNA降解方式是不依赖于脱腺苷酸化的去帽[82],随后是Xrn1介导的5'到3'的外切核酸水解。目前尚不清楚两个相同终止密码子之间的区别。目前关于酵母NMD的工作模型被称为“假3' UTR”模型,这一模型基于这样一个观察结果:在过早终止位点发生的翻译终止

从共纯化实验中获得的关于NMD复合体组成和动态的见解

一些NMD因子的相对低丰度给通过生化方法鉴定它们带来了挑战,大规模研究未能检测到许多单独鉴定的NMD相互作用(综述见[36]。基于质谱的方法在蛋白质鉴定和定量方面的灵敏度提高,以及更有效的纯化方法的改进,克服了最初的局限性。然而,即使是最敏感的方法

Upf2与Upf1结合的相互作用区域

如上所述,参与NMD的最著名的亚复合体包括“核心”NMD因子Upf1、Upf2和Upf3。这三个基因的等位基因最早在1982年被描述为由于UAA终止密码子而抑制表型的因子[90]。这些遗传结果是在首次描述URA3基因中由过早密码子引起的RNA不稳定性之后不久发布的[73]。此外

Upf1-去帽复合体中的相互作用

共纯化实验表明,Upf1是第二个复合体或复合体群的一部分,该复合体包含去帽成分Dcp2、Dcp1和Edc3以及Nmd4和Ebs1[25]、[51]。
Audrey Stevens在45年前描述了酵母中的mRNA去帽活性,这发生在后来被鉴定为5’到3’ RNA外切核酸酶Xrn1的活性被描述后的两年[106]。去帽作用很早就与酵母中的NMD联系在一起[82]。自那时以来

Upf1结合的竞争促使从Upf1-23复合体向Upf1-去帽复合体的转变

发现Upf1-23复合体和Upf1-去帽复合体是互斥的,这导致了Upf1在酵母NMD过程中动态交换伴侣的假设[25]。然而,涉及的蛋白质-蛋白质相互作用的分子基础尚不清楚。为了了解Upf1是如何招募其不同伴侣的,我们进行了一系列结构和重组研究,这些研究证实了之前鉴定的Dcp2的两个UBM(见图3)对于与Upf1结合是必需的[99]。出乎意料的是

Upf1复合体的二聚体形成——是技术伪象还是分子机制?

Upf1-23复合体和Upf1-去帽复合体之间的转换依赖于Upf2和Dcp2与Upf1之间的竞争,以及Nmd4的协同作用,这并不排除可能形成更大的复合体,包括多个Upf1分子。关于酵母Upf1可能二聚化的假设基于近30年前发表的Y2H实验[40],并进一步通过其他实验得到了证实[42]。这些结果表明,CH域可能与

NMD因子之间相互作用的进化及未解决的问题

从纯化组分重建的部分NMD复合体使我们能够更好地理解出芽酵母中这些复合体之间的部分冗余相互作用网络。结合S. cerevisiae中的RNA结合、解旋酶活性和NMD互补的功能测定,这些结果提出了关于涉及分子机制的新见解。虽然这些新数据提供了对相关复合体及其关系的更详细和清晰的视图,但它们并未

未引用的参考文献

[53], [102].

CRediT作者贡献声明

Nadia Ruiz-Gutierrez:撰写——审稿与编辑、可视化、验证、数据管理、概念化。Marc Graille:撰写——审稿与编辑、可视化、验证、监督、方法学研究、资金获取、形式分析、概念化。Hervé le Hir:撰写——审稿与编辑、可视化、验证、监督、资金获取、概念化。Cosmin Saveanu:撰写——审稿与编辑、初稿撰写、可视化、验证、项目规划

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的可能会影响本文所述工作的财务利益或个人关系。

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