细胞质和线粒体中的柠檬酸合成酶在植物中参与镉的解毒过程并帮助植物耐受镉

时间:2026年3月28日
来源:Journal of Hazardous Materials

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镉污染对植物和人类健康威胁显著,羊草中三个柠檬酸合成酶基因(LcCS2/3/4)在Cd胁迫下高表达。通过异源表达发现LcCS2/3增强水稻Cd外流及耐受性,LcCS4促进Cd在根积累,其亚细胞定位差异揭示了互补的解毒机制:细胞质基质中LcCS2/3通过柠檬酸-镉络合物外排发挥作用,线粒体LcCS4则介导胞内隔离。研究为基因工程提升作物镉抗性及土壤修复提供新策略。

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张慧敏|关静|林圆圆|柴团尧|周爱民|胡长星|乔坤
中国东北农业大学园艺与景观建筑学院,哈尔滨,150030

摘要

镉(Cd)污染长期以来一直是一个令人担忧的问题,因为这种重金属对植物生长和人类健康构成重大威胁。柠檬酸合成酶(CS)在三羧酸循环中起着关键作用,它催化的反应产生的柠檬酸(CA)是一种重要的螯合剂,有助于重金属的解毒。在羊草(Leymus chinensis)中,三种编码CS的基因(LcCS2LcCS3LcCS4)在镉胁迫条件下的表达水平显著上调。在本研究中,这些基因在酵母和水稻中的异源表达显著增强了植物的镉耐受性。亚细胞定位分析显示,LcCS2和LcCS3定位于细胞质基质中,而LcCS4定位于线粒体中。LcCS2LcCS3在水稻中的过表达促进了镉从根部的排出,并减少了茎部和籽粒中的镉积累。然而,LcCS4的过表达增加了镉向根部的积累,导致水稻中镉的积累。在所有检测的过表达LcCS2/3/4的水稻品系中,镉处理后CS活性和CA含量均有所增加。因此,LcCS2和LcCS3介导的镉解毒机制可能涉及增加CA的合成和镉离子的螯合,随后通过质膜蛋白将CA–Cd复合物运输出根细胞。相比之下,LcCS4通过液泡膜转运蛋白促进CA–Cd复合物在液泡中的隔离。我们的研究结果表明,LcCS2/3/4通过独特但互补的机制增强了植物的镉耐受性,为提高作物安全性和修复镉污染土壤提供了有价值的分子见解。

引言

气候变化引发的环境压力,包括由于土壤污染造成的重金属(HM)压力,对全球可持续农业和粮食安全构成了重大威胁[1]。重金属既来源于自然活动(如火山活动),也来源于人为活动(包括采矿、农业实践和交通运输排放)[2]。考虑到它们在土壤生态系统中的持久性和移动性,重金属会降低土壤肥力和作物生产力,同时通过食物链威胁生态系统的平衡和人类健康[3]。在各种重金属中,镉(Cd)分布广泛,因为它具有高毒性,并会在植物和动物体内积累[2]。在植物中,镉的毒性会损害光合作用,抑制生长,并导致黄化和坏死[4]、[5]。因此,在气候变化条件下开发有效的策略来减轻镉的毒性对于确保环境可持续性和作物安全至关重要。
作为一种不可生物降解的污染物,镉在土壤中持续存在,会改变其物理化学性质并阻碍修复工作[2]。在可用的修复方法中,植物修复具有一定的优势,包括低成本、可持续性和广泛应用性[6]。此外,植物进化出了多种防御机制来抵御重金属的毒性[4]、[7]。面对重金属暴露,第一道防线是通过根细胞壁限制金属吸收并诱导某些化合物的分泌[5]、[8]。例如,根部分泌的羧酸在增强铝(Al)耐受性方面起着关键作用[9]。Miscanthus属植物的根部分泌物可以改善土壤结构并固定重金属[10]。在重金属胁迫条件下,羊草(Leymus chinensis(Trin.)的根部会分泌大量的有机酸(OAs),这些有机酸可以与重金属离子形成无毒复合物,从而降低重金属的毒性和吸收[11]。第二道防线涉及细胞内的解毒机制(例如,亚细胞区室化、重金属转运蛋白介导的隔离和有机酸的螯合)。例如,在大豆中过表达液泡转运蛋白GmVIT1可以通过增加离子在液泡中的隔离来减轻铁(Fe)和锰(Mn)的毒性[12]。同样,在Arabis paniculata中上调ABCC9的表达可以增强液泡中对镉(Cd)和铅(Pb)的隔离,从而提高耐受性[13]。
有机酸在这两种防御机制中都起着动态作用。柠檬酸(CA)处理可以提高黑槐(Robinia pseudoacacia)在镉胁迫条件下的植物修复能力[14]。一项关于向日葵的研究表明,外源施用的CA(30 mg L−1)可以促进镉向茎部的转移[15]。另一项研究显示,运输到液泡中的有机酸会形成金属-有机沉淀物,从而实现内部解毒[16]。在Thlaspi caerulescens中,锌(Zn)与苹果酸(MA)在表皮细胞液泡中螯合[17]。在苹果中过表达MdALMT14可以通过MA的分泌来增强镉耐受性[18],而在Arabidopsis thaliana中过表达AtOT可以通过草酸的排出来提高对铝的耐受性[19]。因此,有效的植物修复依赖于一个协调的网络,该网络介导金属的吸收、转移和解毒机制;这一网络可以通过基因工程得到增强。
柠檬酸代谢的核心是三羧酸循环,其中柠檬酸合成酶(CS)催化乙酰辅酶A和草酰乙酸的缩合以产生CA[20]、[21]。根据亚细胞定位,CS可以分为线粒体CS(mCS)和细胞质CS(cCS)[22]、[23]。早期研究表明,mCS对花发育、有机酸代谢以及光合色素和蛋白质的调节具有关键作用[24]、[25]。此外,在中性pH条件下,CA与金属(如Al和Cd)之间的稳定性系数高于MA或OA与金属之间的稳定性系数,这使得CA在螯合重金属方面更为有效[26]。在转基因植物中过表达来自不同物种(如A. thaliana [27]、水稻[28]、Rhododendron micranthum [29]和油菜[30])的mCS基因可以增加CA的分泌并提高对重金属(Pb和AI)的耐受性。具体来说,在A. thaliana中表达Malus domestica cCS1可以增加鲜重、CS活性以及CA和Fe的含量[31]。最近的研究比较了mCS和cCS,发现的表达水平高于;然而mCS并不显著改变CA的产量,而在Aspergillus niger中cCS可以增加CA的含量[32]。
羊草是一种多年生草本植物,主要分布在中国北部的碱性草地和欧亚大陆东部的草原上,它具有很强的耐旱、耐盐碱和耐寒能力[33]、[34]。先前的生理学和转录组学分析表明,羊草可以耐受镉(Cd)和铅(Pb)的压力,在镉/铅处理后LcCS2LcCS3LcCS4的表达水平在根部上调[11]。因此,由CS驱动的CA代谢可能对羊草中的重金属解毒非常重要。
本研究的目的是功能性地表征LcCS2LcCS3LcCS4在提高植物对镉的耐受性、积累和转移方面的作用。表达这三个基因的转基因酵母和水稻品系在镉胁迫条件下进行了表型、生理学和离子流分析。我们的发现为CS调节镉解毒的分子机制提供了新的见解,对植物修复的遗传改良和农业安全具有潜在意义。

部分摘要

植物栽培

羊草种子收集自中国黑龙江省安达市的盐碱土壤(pH值约为10)。这些种子被萌发后,在中国哈尔滨的东北农业大学温室中在受控的环境条件下进行栽培。萌发前,种子先用75%的乙醇表面消毒2分钟,然后用10%的NaClO消毒15分钟,最后用无菌蒸馏水彻底冲洗。为了打破休眠状态,还需要进行进一步的消毒处理

LcCS2、LcCS3和LcCS4的系统发育关系及亚细胞定位

系统发育分析的结果显示,LcCS2Triticum aestivumT. dicoccoides中的CS2具有高度序列同源性。LcCS3Triticum urartuHordeum vulgare亚种的同源基因聚类在一起。此外,LcCS4T. urartuT. dicoccoides以及其他几种物种中的CS4高度相似(图S1)。此外,序列比对表明CS2和CS3之间的相似性大于它们与CS4的相似性,这暗示了它们在进化上的潜在差异

镉胁迫诱导羊草中LcCS2/3/4的表达

羊草是欧亚草原上重要的多年生饲料作物,具有很强的适应恶劣环境的能力[36]。其密集的根系和快速生长有利于修复重金属污染的土壤。在植物中,编码CS的基因在重金属胁迫条件下表达,其异构体特异性的表达模式与不同的应激反应相关。例如,在Malus xiaojinensis中,MxCS1在叶片中的表达受到强烈诱导

结论

在本研究中,羊草在镉胁迫条件下LcCS2LcCS3LcCS4的表达水平显著上调。亚细胞定位结果显示,LcCS2和LcCS3是细胞质酶,而LcCS4是线粒体酶,这表明它们具有独特的生理作用。值得注意的是,这些基因在水稻中的过表达提高了植物的镉耐受性、CS活性和CA积累。然而,这些编码酶对镉积累的影响

环境影响

LcCS2-4增强了柠檬酸合成酶的活性、柠檬酸(CA)的合成和镉的耐受性。LcCS2/3将镉离子螯合后通过质膜蛋白将CA-Cd复合物运输出根细胞,而LcCS4则促进CA-Cd复合物在液泡中的隔离。LcCS2-4通过独特但互补的机制成为快速培育低镉积累作物或用于植物修复的宝贵遗传资源。通过靶向基因工程,LcCS可以减轻镉的影响

CRediT作者贡献声明

乔坤:写作——审稿与编辑、资金获取、概念构思。胡长星:监督、项目管理、方法学、正式分析。周爱民:资源获取、资金获取。柴团尧:方法学、概念构思。林圆圆:方法学。关静:研究、数据管理。张慧敏:写作——初稿撰写、研究、数据管理、概念构思。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的竞争性财务利益或个人关系可能影响本文所述的工作。

致谢

本研究得到了中国黑龙江省龙江科技人才“春雁”支持计划(CYQN24018)的支持。

支持信息

Leymus chinensis中的LcCS2/3/4与其他物种中的CS2、CS3、CS4之间的邻接系统发育关系(图S1)。L. chinensis中的LcCS2/3/4与其他物种中的CS2、CS3、CS4的序列比对。烟草叶片中LcCS4的亚细胞定位(图S3)。在酵母菌株中表达LcCS2/3/4的耐受性分析

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