从单克隆抗体中捕获的中国仓鼠卵巢(CHO)磷脂酶B样2(PLBL2)蛋白质形式的解析

时间:2025年11月13日
来源:Biotechnology and Bioengineering

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去除生物制药中的宿主细胞蛋白(HCPs)是关键挑战,尤其对于逃避常规纯化策略的HCPs。本研究以CHO细胞表达的磷脂酶B样2(PLBL2)为案例,通过定制化多克隆抗体亲和层析树脂成功捕获并富集了与单抗 pembrolizumab 共纯化的PLBL2。质谱和电泳分析揭示了PLBL2的多样性蛋白形式,包括17种N-糖基化、6种O-糖基化、5种磷酸化位点及C203/S204裂解位点,产生分子量约28kDa和44kDa的两种裂解片段。首次系统解析了PLBL2的蛋白组学特征,为开发针对性纯化工艺提供了理论依据。

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在生物制药制造过程中,去除宿主细胞蛋白(HCPs)是一项至关重要的任务,它直接关系到患者的用药安全和药品供应的稳定性。然而,对于某些特定的HCPs来说,这一目标的实现却面临着巨大的挑战。以中国仓鼠卵巢(CHO)细胞来源的磷脂酶B样蛋白2(PLBL2)为例,它因其对传统纯化策略的规避能力而成为工艺工程师的一大难题。PLBL2在生产过程中不仅容易与治疗性抗体共纯化,还可能引发免疫反应,这使得其去除变得尤为关键。

本文以PLBL2为研究对象,展示了通过一种创新的策略对其进行全面的蛋白质形式(proteoforms)解析。该方法结合了针对CHO PLBL2的特异性抗体、固相支持物上的固定化以及先进的质谱技术,实现了对PLBL2的高效捕获、富集和回收。这一过程不仅揭示了PLBL2的多种分子形式,包括电荷变异体、N连接和O连接糖基化、磷酸化以及裂解产物,还为后续的深入分析提供了高质量的材料。通过这种方法,研究人员能够对PLBL2进行详尽的结构和功能分析,从而为改进纯化工艺、提高产品质量和安全性提供科学依据。

在生物制药领域,HCPs的种类繁多,其物理化学特性也各不相同。过去,研究人员往往将HCPs视为单一的分子物种,缺乏对其多样性的系统性研究。然而,随着分析技术的进步,尤其是质谱技术的应用,我们开始能够识别并分析这些HCPs的多种变体。这些变体的出现,可能是由于基因变异、RNA剪接或翻译后修饰(PTMs)等多种因素所致。PLBL2作为CHO细胞表达的一种HCP,其在生物制药生产中的存在一直是一个未解之谜,直到本文的研究才首次对其进行了详细的蛋白质形式分析。

研究团队通过一系列实验,首先从治疗性抗体pembrolizumab中捕获PLBL2,并通过固相支持物上的抗体富集,显著提高了PLBL2的浓度,从而克服了其在生物药物中含量极低的检测难题。这一过程不仅揭示了PLBL2的多种电荷变异体,还发现了其在分子大小上的多样性。通过对这些变异体的深入分析,研究人员能够识别出PLBL2的多个糖基化位点和磷酸化位点,这些信息对于理解PLBL2的结构和功能具有重要意义。

PLBL2的糖基化和磷酸化修饰不仅影响其分子量和电荷状态,还可能改变其与其他生物分子的相互作用方式。例如,研究发现PLBL2的多个N连接糖基化位点和一个O连接糖基化位点,这些修饰的广泛存在表明PLBL2在CHO细胞中的表达过程中经历了复杂的翻译后修饰。此外,PLBL2的磷酸化修饰同样表现出显著的多样性,不同位点的修饰程度差异较大,其中某些位点的修饰率高达52%,而另一些则仅有2%。这种修饰的多样性可能影响PLBL2的稳定性、活性以及与治疗性抗体的相互作用,进而影响其在纯化过程中的行为。

研究还揭示了PLBL2的裂解位点,这为理解其分子大小变异提供了关键线索。通过肽图分析,研究人员确定了PLBL2在C203和S204之间的裂解位点,这一发现不仅有助于进一步解析PLBL2的结构,还为优化纯化工艺提供了理论支持。值得注意的是,USP(美国药典委员会)发布的重组CHO PLBL2作为分析参考材料(ARM),其裂解位点和糖基化位点与本文的研究结果存在差异,这可能源于生产、纯化和储存过程中的不同条件,也突显了在生物药物开发中使用单一ARM的局限性。

此外,研究还探讨了PLBL2在生物制药生产中的潜在影响。由于PLBL2的多样性,它可能与治疗性蛋白产生复杂的相互作用,这不仅增加了纯化过程的难度,还可能对药物的稳定性和安全性构成威胁。因此,深入理解PLBL2的分子形式及其修饰模式,对于开发更有效的纯化策略具有重要意义。例如,基于PLBL2的结构信息,可以设计出更特异的洗脱缓冲液,从而提高其在纯化过程中的清除率。这种策略的实施,可能需要结合结构生物学、计算建模和分子动力学模拟等多学科方法,以实现对PLBL2及其变体的精准控制。

PLBL2的研究成果不仅适用于CHO细胞表达系统,还为其他生物制药过程中的HCPs分析提供了可借鉴的方法。随着生物制药技术的不断发展,新的治疗方式和表达系统层出不穷,如腺相关病毒(AAV)和慢病毒载体等。这些新型生物药物的生产同样面临着HCPs的去除难题,而本文提出的方法可以广泛应用于这些领域,帮助研究人员更全面地了解HCPs的特性,并据此优化纯化工艺。

本文的研究不仅填补了PLBL2在生物制药领域的知识空白,也为未来的HCPs分析提供了新的思路。通过结合特异性抗体捕获、富集和质谱等技术,研究人员能够对HCPs进行全面的解析,从而为制药企业设计更有效的纯化策略提供支持。这一方法的应用,有助于提高生物药物的质量控制水平,确保其在临床使用中的安全性和有效性。

总体而言,PLBL2的研究揭示了HCPs在生物制药生产中的复杂性和多样性。这些发现不仅对CHO细胞表达的治疗性蛋白具有重要意义,还可能为其他生物制药过程中的HCPs去除提供指导。随着生物制药行业的不断发展,深入理解HCPs的分子形式及其修饰模式,将成为提升产品质量和确保患者安全的关键环节。

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