日本鳗(Anguilla japonica)卵巢发育过程中17β-HSD12a的双羰基还原酶活性

时间:2026年1月1日
来源:The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology

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本研究揭示日本鳗鲡17β-HSD12在卵巢中高表达,尤其在迁移核和中期维生素阶段,其催化17OHP生成DHP及具有C20还原酶活性,上游促性腺激素显著上调其表达,为人工繁殖优化提供理论依据。

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霍鹏辉|陈世熙|黄静|杨颖|白兆仁|谢阳杰|赖晓健
厦门集美大学渔业学院,中国厦门361021

摘要

17β-羟基类固醇脱氢酶亚型12(17β-HSD12)负责性甾体在C17位置的羰基和羟基之间的反应。我们之前的研究表明,在Anguilla japonica的卵泡成熟过程中,hsd17b12a的表达水平较高,在迁移核阶段达到峰值。这表明17β-HSD12可能将17α-羟基孕酮(17OHP)转化为17α,20β-二羟基-4-孕烯-3-酮(DHP),这是一种促进成熟的类固醇。为了阐明hsd17b12aA. japonica中的功能,我们研究了其时空表达模式、在性甾体激素合成中的作用以及其受上游促性腺激素的调控情况。结果表明,与其他组织相比,hsd17b12a在卵巢中的表达最高。在卵巢内部,hsd17b12a的表达在迁移核阶段达到峰值,随后是卵黄中期阶段,这两个阶段的表达水平均显著高于其他阶段。转染了A. japonica hsd17b12a质粒的HEK293T细胞能够将雌酮、雄烯二酮和17OHP分别转化为17β-雌二醇、睾酮和DHP,转化率分别为23.70 ± 10.65%、14.95 ± 4.42%和22.35 ± 0.53%。体外实验表明,10 ng/mL的17OHP和100 µg/mL的鲤鱼垂体提取物能够显著增加具有迁移核阶段的卵泡中hsd17b12a的表达,尽管DHP的合成没有显著变化。本研究表明,由鳗鱼hsd17b12a编码的酶具有C17和C20羰基还原酶活性。这些发现为理解鳗鱼的生殖内分泌调控机制提供了新的见解,并为优化人工成熟和产卵提供了理论支持。

引言

鳗鱼(Anguilla属)是全球重要的水产养殖物种,主要养殖区域位于东亚。目前,大多数工业化养殖的鱼类已经实现了人工繁殖,包括在遗传改良方面的进展。然而,鳗鱼苗的人工繁殖尚未取得商业突破。尽管日本科学家在2010年成功培育出了第二代(F2)日本鳗鱼(Anguilla japonica)的人工苗[1]、[2],但由于幼体产量低以及与瘦头幼体养殖相关的高成本[3],仍无法大规模生产鳗鱼苗。因此,需要进一步研究以开发相关技术和科学基础,包括优化用于亲鱼的成熟和排卵技术,以提高卵子质量。此外,作为进化上古老的硬骨鱼类,鳗鱼具有独特的特征,例如只拥有一个拷贝的cyp19a1基因[4],这使得它们的生殖内分泌机制值得深入研究。
性甾体激素,包括11-酮睾酮(11-KT)、17β-雌二醇(E2)和17α,20β-二羟基-4-孕烯-3-酮(DHP),在雌鱼(包括鳗鱼)的卵巢发育过程中起着关键作用[5]。在大多数硬骨鱼类中,DHP被认为是触发卵细胞最终成熟的关键激素。DHP通常是通过20β-羟基类固醇脱氢酶(20β-HSD)催化17α-羟基孕酮(17OHP)的20-羰基还原为20-羟基而产生的[6]。羰基还原酶/20β-HSD(CR/20β-HSD)最初是从新生猪(Sus scrofa)的睾丸中分离出来的,并表现出20β-HSD活性[7]。后来,从虹鳟鱼(Oncorhynchus mykiss)的卵巢卵泡中分离出了两种与猪20β-HSD高度同源的cDNA,分别命名为CR样20β-HSD A型和B型,其中A型具有20β-CR活性[8]。CR/20β-HSD的同源物也在欧亚鳊(Plecoglossus altivelis)、鲶鱼(Clarias gariepinus)和尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)中被克隆出来;然而,进一步研究表明,它们将17OHP转化为DHP的转化率非常低[9]、[10]、[11]。同时,斑马鱼(Danio rerio)的hsd20b2参与了皮质醇的代谢,但尚未研究其在将17OHP转化为DHP中的作用[12]。此外,CR/20β-HSD在虹鳟鱼和斑马鱼的所有组织中广泛分布,不适合在短时间内快速大规模合成DHP[8]、[12]。随后,从马苏鲑(Oncorhynchus masou)中鉴定出了将17OHP转化为DHP的基因hsd17b12L[13]。在其他鱼类物种中也发现了hsd17b12L的类似功能,包括Acipenser schrenckii[14]和Anguilla japonica[15]。最初,17β-HSD12被认为仅参与脂肪酸代谢。然而,后续研究表明,该基因在类固醇代谢中也起着重要作用,能够催化雌酮(E1)转化为E2[16]。我们的研究表明,在鳗鱼中hsd17b12a具有很强的合成睾酮(T)和E2的能力,并参与日本鳗鱼中11-KT的生成[15]、[17]。我们之前的研究还发现,在卵细胞成熟过程中hsd17b12a的表达水平显著增加,而hsd20b2的表达水平逐渐下降[18]。此外,日本鳗鱼hsd17b12L的20β-HSD活性很强,转化率超过20%,低于O. masouA. schrenckii[13]、[14]、[19]。因此,我们假设鳗鱼的hsd17b12a可能也具有20β-HSD活性,类似于hsd17b2L。尽管17β-HSD1和17β-HSD3传统上被认为是负责E2和T合成的主要酶[5],但在卵泡成熟过程中hsd17b1hsd17b3的表达水平低于hsd17b12。因此,我们推测17β-HSD12也可能作为生成E2和T的主要酶。
为了阐明hsd17b12a的表达特征、其在性甾体激素合成中的作用以及其在日本鳗鱼中的调控机制,我们通过定量实时PCR(qRT-PCR)分析了不同发育阶段的各种组织和卵巢卵泡中hsd17b12a的表达模式。通过构建hsd17b12a的表达质粒,在体外分析了17β-和/或20β-CR活性,并通过体外培养迁移核(MN)阶段的卵泡研究了上游促性腺激素对hsd17b12a转录和表达的调控作用。本研究的结果深入揭示了性甾体激素的代谢途径,并阐明了hsd17b12a的生殖内分泌调控机制,有助于优化人工成熟和排卵并提高卵子质量。

实验部分

伦理声明

本研究中的所有实验均获得了集美大学动物伦理委员会的批准。在注射、活检和卵泡抽吸之前,鳗鱼都接受了MS-222麻醉。我们尽一切努力减轻鳗鱼的痛苦。

人工发育试验

32条日本鳗鱼(A. japonica),体重(BW)为789.19 ± 46.28 g,总长度(TL)为73.85 ± 1.50 cm(平均值 ± 标准误),捕获于中国福建省的一个河口。所有鳗鱼都被运送到集美大学并在此饲养

17β-HSD12的系统发育分析

扩增了包含日本鳗鱼hsd17b12a开放阅读框(ORF)的2048 bp核苷酸序列。与Hsd17b12a(NCBI登录号:LC536521.1)的比对显示,这些序列是相同的。推导出的氨基酸序列长度为314个氨基酸。系统发育分析表明,Hsd17b12a形成了一个独立的支系。而Hsd17b12L与Hsd20b2的亲缘关系比与Hsd17b12更近。鲶鱼(Clarias batrachus)和尼罗罗非鱼以及CR/Hsd20b也有类似的亲缘关系

hsd17b12a的表达模式

在日本鳗鱼中,hsd17b12a表现出独特的时空表达模式。在所有检测的组织中,它在卵巢中的表达最高,尤其是在MN阶段。这一发现与先前的研究一致,表明hsd17b12a在MN阶段的卵泡中的表达水平高于其他发育阶段[18]。hsd17b12a的表达模式表明它可能在鳗鱼卵泡的最终成熟阶段起重要作用

结论

总之,通过表达模式、质粒表达和体外培养组织刺激的研究,本研究表明,由鳗鱼hsd17b12a编码的酶具有C17和C20 CR活性。其表达受上游促性腺激素的上调。未来,可以使用RNA-seq分析在体外培养的卵泡中同时接受CPE或hCG和17OHP处理的组与仅接受17OHP处理的组之间的转录组差异

CRediT作者贡献声明

霍鹏辉:撰写 – 原始草稿,实验研究。白兆仁:实验研究。杨颖:实验研究。黄静:数据管理。陈世熙:验证,方法学。赖晓健:撰写 – 审稿与编辑,监督,资金获取,概念构思。谢阳杰:验证,监督。

利益冲突声明

作者声明没有已知的可能会影响本文报告工作的财务利益或个人关系

致谢

本工作得到了以下机构的资助:中国福建省自然科学基金(项目编号2023J01144);中国厦门市自然科学基金(项目编号3502Z202373029);中国国家自然科学基金(项目编号41806193)。

利益冲突声明

作者声明不存在利益冲突。

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