AARS1介导的AKR1B10乳酸化修饰通过稳定有氧糖酵解正反馈环路驱动肝细胞癌仑伐替尼耐药

时间:2025年12月28日
来源:Clinical and Translational Medicine

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本研究揭示了肝细胞癌(HCC)仑伐替尼耐药(LR)的新机制。研究发现,AARS1介导的AKR1B10蛋白K173位点乳酸化修饰,通过阻断泛素-蛋白酶体降解途径稳定AKR1B10蛋白。稳定的AKR1B10与LDHA相互作用,促进其Y10位点磷酸化,从而增强有氧糖酵解和乳酸生成。增加的乳酸进一步诱导组蛋白H3K18乳酸化(H3K18la),转录上调LDHA表达,形成正反馈环路。靶向该轴线的AKR1B10抑制剂依帕司他(EPA)与仑伐替尼联用,在临床前模型中展现出协同抗肿瘤效应,为克服HCC耐药提供了新策略。

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文章内容归纳总结
1 有氧糖酵解促进HCC的仑伐替尼耐药
为了探究仑伐替尼耐药(LR)的机制,研究人员首先对公共数据集GSE211850进行了分析。差异基因表达和基因本体富集分析显示,糖酵解和糖异生信号通路是LR表型中富集的关键KEGG通路。基因集富集分析也表明,LR与HCC中的乳酸生成相关。为了验证这一假设,研究团队建立了LR HCC细胞系(Huh7和Hep3B)。IC50测定证实,与亲代细胞相比,LR细胞对仑伐替尼的耐药性显著更高,且仑伐替尼诱导的细胞凋亡显著减少,成功构建了LR模型。
有氧糖酵解以葡萄糖摄取和乳酸产生增加为特征,与靶向治疗耐药有关。研究人员检测了亲代和LR细胞中的ATP水平、葡萄糖摄取和细胞外乳酸水平。结果显示,LR细胞表现出更高的ATP水平、增加的葡萄糖消耗和升高的乳酸产量。Seahorse分析进一步揭示了LR细胞具有增强的细胞外酸化率(ECAR),包括基础糖酵解和糖酵解能力,表明糖酵解增强是LR的共同特征。
醛酮还原酶(AKRs)是催化辅因子依赖性氧化还原反应的胞质酶。为了探索它们在LR中的潜在作用,研究人员重新分析了GSE211850数据,比较了亲代和LR Huh7细胞中AKRs的表达。结果显示,LR细胞中AKR7A3、AKR1C3、AKR1B10和AKR1D1的mRNA表达显著更高。通过整合GTEx和TCGA的转录组数据,研究人员分析了14种AKRs在25种肿瘤类型中的表达谱。AKRs在大多数消化系统肿瘤中特异性升高,尤其是在HCC和胆管癌(CHOL)中,且通常高于正常组织,表明AKRs可能作为启动癌基因促进肿瘤进展。
为了评估AKRs在HCC中的诊断潜力,ROC分析显示,只有AKR1B10和AKR1C3的曲线下面积(AUC)值≥0.8,表明具有良好的诊断价值。单变量Cox分析确定,只有AKR1B10和AKR1C3是HCC患者总生存期(OS)、无进展生存期(PFS)和无病生存期(DFS)较差的统计学显著风险因素。公共蛋白质组学数据分析证实,与癌旁组织相比,HCC组织中AKR1B10和AKR1C3的蛋白水平显著更高。单细胞RNA测序数据(GSE166635)的重新分析显示,AKR1B10在肝细胞中的表达高于AKR1C3,且大多数AKRs主要在肝细胞中表达。相关性分析揭示了AKR1B10表达与糖酵解基因集富集分数之间存在显著的正相关,表明其参与了HCC的糖酵解过程。HCCDB数据库中14个HCC数据集的分析一致显示,HCC中AKR1B10 mRNA表达显著高于癌旁组织。空间转录组学数据(HCCDB)也证实,与癌旁区域相比,肿瘤区域中AKR1B10的表达普遍更高。关键的是,qRT-PCR和Western blot验证了LR细胞中AKR1B10的mRNA和蛋白水平显著高于亲代细胞。因此,研究人员将AKR1B10确定为候选基因,以进一步研究其在LR中的功能作用。
2 AKR1B10通过有氧糖酵解介导仑伐替尼耐药
为了确认AKR1B10在HCC LR进展中的刺激作用,研究人员在Huh7和Hep3B LR细胞系中稳定敲低了AKR1B10。qRT-PCR和Western blot证实了敲低效率。正如预期的那样,抑制AKR1B10显著增强了仑伐替尼敏感性,表现为LR细胞的IC50值降低和细胞凋亡增加。与此一致的是,在LR细胞中敲低AKR1B10降低了细胞ATP水平、葡萄糖摄取和细胞外乳酸水平,表明有氧糖酵解受到抑制。Seahorse分析进一步揭示了敲低AKR1B10后ECAR降低,包括基础糖酵解和糖酵解能力。
相反,研究人员在亲代HCC细胞中稳定过表达了AKR1B10,qRT-PCR和Western blot验证了过表达效率。过表达AKR1B10显著增加了IC50值,并减少了仑伐替尼诱导的细胞凋亡。值得注意的是,稳定表达AKR1B10通过增加细胞ATP水平、葡萄糖摄取、细胞外乳酸水平和糖酵解能力,增强了HCC细胞的有氧糖酵解。这些发现表明,AKR1B10促进LR并调节HCC的有氧糖酵解。
为了进一步阐明有氧糖酵解是否对AKR1B10介导的LR至关重要,研究人员用糖酵解抑制剂2-DG处理细胞。添加2-DG部分逆转了AKR1B10过表达所赋予的增强的LR,降低了IC50值并增加了细胞凋亡。此外,2-DG抵消了AKR1B10过表达对有氧糖酵解的刺激作用,降低了ATP水平、葡萄糖摄取和乳酸产生。相反,糖酵解激活剂鱼藤酮增加了AKR1B10敲低细胞的IC50值并减少了细胞凋亡。此外,鱼藤酮部分挽救了AKR1B10敲低对有氧糖酵解的抑制作用。这些结果表明,AKR1B10至少部分通过调节有氧糖酵解来促进LR。
3 Lys173位点的乳酸化修饰增强AKR1B10蛋白表达
研究人员接下来研究了LR细胞中AKR1B10蛋白表达显著升高的机制。他们首先考虑了基因组改变。然而,对TCGA队列中AKR1B10基因的体细胞拷贝数变异分析显示,这些事件与AKR1B10 mRNA水平之间没有相关性。由于蛋白质水平也可以通过翻译后修饰(PTMs)进行调节,并且考虑到LR、乳酸和乳酸化相关基因特征之间的关联,以及细胞内乳酸驱动赖氨酸乳酸化(Kla)的已知作用,研究人员假设乳酸化可能在仑伐替尼耐药的HCC中被激活。
Western blot分析证实,与亲代细胞相比,LR细胞系中的全赖氨酸乳酸化(pan-Kla)水平更高。随着仑伐替尼治疗时间的延长,pan-Kla水平进一步增加。研究人员收集了部分缓解(PR)和疾病进展(PD)患者的样本各4例。使用pan-Kla抗体进行免疫沉淀和Western blot检测,检测到了AKR1B10和乳酸化的AKR1B10。PD样本中的AKR1B10蛋白水平和乳酸化水平显著高于PR样本。一致地,LR细胞中的AKR1B10乳酸化也高于亲代细胞。值得注意的是,在表达Flag-AKR1B10的HCC细胞中,shRNA介导的AKR1B10敲低显著降低了AKR1B10乳酸化水平。
为了鉴定特异的乳酸化位点,质谱分析揭示了AKR1B10氨基酸序列中Lys173(K173)处存在单个赖氨酸乳酸化位点。K173在从褐家鼠到智人的物种中高度保守。研究人员将AKR1B10 K173突变为精氨酸(R)(AKR1B10 K173R)以模拟非乳酸化状态,并在HCC细胞中表达了Flag标记的突变体。免疫沉淀证实,K173R突变消除了AKR1B10的乳酸化。用乳酸钠(Nala)处理以浓度依赖性和时间依赖性方式增强了Flag-AKR1B10的乳酸化。相反,Nala处理并未增加Flag-AKR1B10 K173R的乳酸化。
研究人员随后探讨了乳酸化是否调节AKR1B10蛋白表达。与野生型Flag-AKR1B10不同,Flag-AKR1B10 K173R并未显著增加HCC细胞中的AKR1B10蛋白水平。此外,在稳定表达AKR1B10 shRNA的LR HCC细胞中,野生型Flag-AKR1B10,而非Flag-AKR1B10 K173R,以剂量依赖性方式显著增加了AKR1B10蛋白表达。在功能上,与野生型AKR1B10不同,Flag-AKR1B10 K173R未能增强对仑伐替尼的耐药性,IC50值或细胞凋亡率均无变化。由于AKR1B10是一种关键的醛糖还原酶,研究人员假设其乳酸化状态可能通过调节其酶活性来影响HCC的葡萄糖代谢。为了验证这一点,研究人员评估了不同乳酸化水平下AKR1B10的活性。ELISA结果表明,野生型AKR1B10过表达增强了其分泌;然而,K173R突变体未能产生成熟且稳定的蛋白质。通过比较上清液中NADPH在340 nm处的消耗量(相对于AKR1B10分泌水平)来评估归一化酶活性,发现K173位点的突变并未显著改变AKR1B10的酶活性。这些数据表明,AKR1B10在Lys173位点发生乳酸化,这对于维持其蛋白质稳定性和促进LR表型至关重要。
4 AARS1与AKR1B10相互作用并使其乳酸化
为了鉴定负责利用乳酸和ATP催化AKR1B10乳酸化的乳酸转移酶,研究人员筛选了几种已建立的乳酸转移酶,包括KAT5、KAT8、AARS1和AARS2。TCGA HCC队列中mRNA表达水平的相关性分析显示,只有AARS1与AKR1B10表现出强正相关。免疫共沉淀(Co-IP)和Western blot证明,过表达AARS1增加了HCC细胞中AKR1B10的蛋白水平和乳酸化水平。相反,shRNA介导的AARS1抑制降低了AKR1B10蛋白和乳酸化水平。此外,siRNA敲低已报道的乳酸转移酶KAT5或KAT8并未抑制AKR1B10 Lys173的乳酸化,表明这两种酶均不催化这种特异性修饰。生存分析确定AARS1是HCC患者OS、PFS和DFS较差的显著风险因素。差异表达分析显示,与癌旁组织相比,大多数肿瘤类型(包括HCC)中AARS1 mRNA水平更高。HCCDB数据库的空间转录组学数据证实,与癌旁区域相比,肿瘤区域中AARS1的表达相对较高。
293T细胞中的Co-IP实验表明,重建的Flag-AKR1B10与HA标记的AARS1直接相互作用。Flag-AKR1B10 K173R也能下拉HA-AARS1,表明K173突变本身不会破坏AKR1B10-AARS1的结合。内源性Co-IP证实了HCC细胞中AARS1和AKR1B10之间的关联。这些结果确立了AARS1是一种与AKR1B10相互作用的蛋白质。
研究人员接下来研究了AARS1是否介导AKR1B10乳酸化和稳定性。根据报道,AARS1催化口袋残基(R77A, M100A, W176E, V218D, D239A;表示为AARS1-5 M)的突变会破坏乳酸结合,研究人员构建了HA标记的AARS1-5 M突变体。与野生型HA-AARS1不同,HA-AARS1-5 M未能增强AKR1B10乳酸化。一致地,只有野生型HA-AARS1,而非HA-AARS1-5 M,在Nala处理下乳酸化了Flag-AKR1B10。此外,虽然HA-AARS1增加了表达Flag-AKR1B10细胞中的乳酸化,但Flag-AKR1B10 K173R未显示这种增加,支持了AARS1介导的Lys173乳酸化对于AKR1B10蛋白积累至关重要的假设。
为了绘制特异的结合界面,分子对接分析预测了潜在的相互作用位点:AKR1B10残基Y295-V297与AARS1残基G456-G458,以及AKR1B10残基A744-K747与AARS1残基T4-L7。值得注意的是,AKR1B10的Lys173在空间上靠近AARS1的催化口袋,使其处于有利的乳酸化催化位置。使用各种突变构建体的体外Co-IP显示,两个预测的结合界面独立地促进了AKR1B10-AARS1相互作用。免疫荧光证实了AARS1-AKR1B10相互作用及其在细胞质中的共定位。
5 AARS1依赖的Lys173乳酸化抑制K63多聚泛素化介导的AKR1B10降解
赖氨酸是蛋白质结构和功能所必需的残基,会经历各种PTMs。值得注意的是,赖氨酸乳酸化已被报道可抑制蛋白质泛素化和随后的蛋白酶体降解。因此,研究人员接下来研究了AKR1B10在Lys173位点的乳酸化调节其HCC细胞中蛋白水平的机制。
首先,研究人员用蛋白酶体抑制剂MG132处理HCC细胞。正如预期的那样,MG132处理以时间依赖性方式增加了内源性AKR1B10的表达。此外,MG132有效消除了由AARS1沉默诱导的AKR1B10加速降解。此外,CHX追踪实验表明,沉默AARS1显著缩短了AKR1B10蛋白的半衰期,而过表达HA-AARS1(而非催化失活的突变体HA-AARS1 5 M)延长了其半衰期。
根据从PhosphoSitePlus数据库检索的数据,研究人员注意到之前已有报道称AKR1B10的Lys173位点发生泛素化。研究人员随后检测了AARS1介导的AKR1B10乳酸化是否调节其泛素化。使用泛素化阶梯分析,研究人员观察到AKR1B10 K173R突变体的泛素化水平明显高于野生型AKR1B10。一致地,AARS1沉默显著增加了野生型AKR1B10的多聚泛素化水平,但对AKR1B10 K173R突变体没有影响。类似地,糖酵解抑制剂2-DG显著增强了HCC细胞中内源性AKR1B10的多聚泛素化。相反,异位表达AARS1显著降低了野生型AKR1B10的多聚泛素化,但对K173R突变体没有影响,并且这种降低被2-DG逆转。同时,过表达野生型AARS1(具有乳酸转移酶活性),而非HA-AARS1 5 M,显著抑制了AKR1B10多聚泛素化。此外,AARS1过表达特异性抑制了K63连接的多聚泛素化,但不抑制K6-、K29-或K48连接的多聚泛素化。相反,AARS1沉默显著促进了K63连接的多聚泛素化。
研究人员随后将感染了表达Flag标记的野生型AKR1B10或AKR1B10 K173R突变体的慢病毒的Huh7细胞皮下注射到无胸腺裸鼠体内。所有肿瘤均用仑伐替尼治疗。与体外数据一致,表达野生型AKR1B10的异种移植物对仑伐替尼的敏感性显著低于表达K173R突变体的异种移植物。异种移植物的免疫组织化学(IHC)染色显示,携带野生型AKR1B10的肿瘤中AKR1B10表达强烈,表明K173R突变体在体内未能维持AKR1B10蛋白水平。这些结果共同表明,Lys173位点的乳酸化阻止了多聚泛素化介导的AKR1B10蛋白降解,从而增加了其蛋白水平。
6 Lys173乳酸化的AKR1B10促进LDHA磷酸化并通过促进组蛋白乳酸化增加LDHA的转录水平
为了进一步研究AKR1B10在有氧糖酵解中的特定生物学功能,研究人员对人HCC细胞中AKR1B10免疫沉淀物进行了质谱分析。结果显示,AKR1B10与乳酸脱氢酶A(LDHA)和乳酸脱氢酶B(LDHB)相互作用,这两种酶是催化丙酮酸转化为乳酸的已知酶。单细胞RNA测序数据(GSE166635)的分析令人惊讶地显示,LDHA mRNA表达在肝细胞中明显高于LDHB,而LDHB在肝细胞中表达极少。HCCDB的空间转录组学数据进一步证明,在HCC细胞内,LDHA表达水平显著高于LDHB,而LDHB主要在肿瘤微环境的免疫细胞中表达。因此,选择LDHA作为AKR1B10的候选相互作用伙伴和效应分子进行后续研究。正如预期的那样,内源性蛋白质的Co-IP证实了HCC细胞中AKR1B10和LDHA之间的关联。免疫荧光测定证实了这种直接相互作用,显示两种蛋白质在细胞质中共定位。
为了鉴定特异的结合位点,研究人员使用Discovery Studio模拟了AKR1B10-LDHA相互作用。预测的结构表明,AKR1B10的K169与LDHA的H181之间,以及AKR1B10的P189与LDHA的E313之间存在潜在的结合位点。使用突变构建体的体外Co-IP实验进一步证明,AKR1B10和LDHA上的这些特定残基对于它们的相互作用是不可或缺的。
鉴于LDHA酶活性受Tyr10(Y10)位点磷酸化的调节,该磷酸化促进四聚化并增强NADH结合,研究人员注意到模型中AKR1B10 K173与LDHA Y10在空间上接近。这表明AKR1B10 K173可能调节LDHA Y10磷酸化。有趣的是,过表达野生型AKR1B10,而非AKR1B10 K173R突变体,强烈增强了LDHA Y10磷酸化。此外,AKR1B10过表达增加了LDHA Y10磷酸化水平,而其抑制则降低了该水平。研究人员观察到AKR1B10表达水平也影响了总LDHA蛋白水平,表明AKR1B10可能调节LDHA mRNA表达或蛋白质稳定性。GSE211215数据分析显示,抑制AKR1B10下调了LDHA和LDHB mRNA水平。一致地,在LR细胞中敲低AKR1B10降低了LDHA mRNA,而在HCC细胞中过表达AKR1B10则增加了LDHA mRNA。
鉴于肿瘤微环境中的高乳酸水平,研究人员假设LDHA mRNA上调可能由组蛋白乳酸化介导。然而,mRNA稳定性测定表明,AKR1B10不影响LDHA mRNA稳定性。ChIP-seq数据(GSE156674)的重新分析表明,LDHA启动子区域可能受组蛋白H3赖氨酸18乳酸化(H3K18la)的调节。支持这一点的是,LDHA mRNA水平被糖酵解(从而乳酸产生)抑制剂2-DG下调,并通过添加鱼藤酮上调。使用六对引物跨越LDHA启动子的ChIP-qPCR测定证实了H3K18la在该位点的显著富集。此外,AKR1B10抑制减弱了LDHA启动子处的H3K18la富集,而稳定过表达AKR1B10则增强了这种富集。这些结果确立了H3K18la正向调节LDHA转录。
7 LDHA-Y10位点的磷酸化对于AKR1B10介导的HCC仑伐替尼耐药至关重要
为了从功能上确定LDHA Y10磷酸化对AKR1B10的必要性,研究人员在特定的HCC细胞模型中进行了拯救实验,调节LDHA表达和磷酸化。
首先,研究人员在稳定过表达AKR1B10的HCC细胞中使用shRNA敲低了LDHA表达。qRT-PCR和Western blot证实了有效的LDHA沉默,导致LDHA蛋白和LDHA Y10磷酸化水平降低。值得注意的是,LDHA敲低也降低了AKR1B10表达,表明这些蛋白质之间可能存在正反馈环。正如预期的那样,抑制LDHA显著增加了AKR1B10过表达细胞对仑伐替尼的敏感性,表现为IC50值降低和细胞凋亡增加。一致地,LDHA敲低减弱了AKR1B10介导的有氧糖酵解增强,降低了细胞ATP水平、葡萄糖摄取、细胞外乳酸产生以及ECAR,包括基础糖酵解和糖酵解能力。
接下来,在稳定抑制AKR1B10的LR细胞中,研究人员重新引入了野生型LDHA或磷酸化缺陷突变体LDHA Y10A。Western blot验证了成功表达。与野生型LDHA不同,重新表达LDHA Y10A未能挽救LR,IC50值或细胞凋亡率均无显著变化。在功能上,野生型LDHA恢复了细胞ATP水平、葡萄糖摄取和乳酸产生,而LDHA Y10A没有效果,证明Y10磷酸化对于AKR1B10的促糖酵解效应至关重要。Seahorse分析证实,在AKR1B10敲低的LR细胞中,过表达LDHA Y10A未能恢复ECAR、基础糖酵解或糖酵解能力。这些数据表明,LDHA在Y10位点的磷酸化对于维持其有氧糖酵解中的酶活性以及促进AKR1B10介导的LR表型至关重要。
为了评估AKR1B10-LDHA轴在LR中的临床相关性,研究人员分析了治疗后手术HCC样本中它们的表达和共定位。免疫荧光染色显示,与高表达的患者相比,AKR1B10和LDHA水平低的患者对仑伐替尼的反应更好(荧光强度降低更大)。两种蛋白质主要在细胞质中共定位。为了进一步评估AKR1B10作为潜在的HCC生物标志物,对161份HCC标本进行了免疫组织化学染色。根据免疫反应性将样本分为低、中或高AKR1B10表达,并且癌旁非肿瘤组织中的AKR1B10表达显著低于HCC组织。此外,来自PD患者的组织比来自PR患者的组织表现出更高的AKR1B10表达。生存分析表明,具有较高AKR1B10蛋白水平的患者OS和PFS显著缩短,表明AKR1B10可能作为仑伐替尼反应的预测因子和预后风险因素。
8 靶向AKR1B10-LDHA轴可提高仑伐替尼在HCC中的疗效
根据之前的报道,依帕司他(EPA)是AKR1B10的抑制剂,在多种癌症类型中抑制其分泌和酶活性。因此,本研究旨在验证EPA对AKR1B10的抑制作用,并探索其在HCC中与仑伐替尼的潜在协同抗癌作用。
在体外,EPA与仑伐替尼联合使用,在亲代HCC细胞和LR细胞中均诱导了比仑伐替尼单药治疗显著更高的细胞凋亡率,表明具有协同抗癌作用。为了进一步评估体内的治疗协同作用,研究人员将LR Huh7细胞皮下接种到无胸腺裸鼠体内。同时用EPA和仑伐替尼治疗的肿瘤表现出比任一单药治疗组显著更好的反应。与此一致的是,与单药治疗组相比,联合治疗导致个体小鼠的肿瘤重量和体积从基线水平显著减少。这些肿瘤的免疫组织化学分析证实,联合治疗显著降低了AKR1B10和LDHA的表达。
为了证实这些发现,研究人员建立了一个仑伐替尼耐药的小鼠Hepa1-6(Hepa1-6 LR)细胞系。验证包括对仑伐替尼的更高IC50值和增加的pan-Kla水平,与亲代细胞相比。Western blot和免疫沉淀分析进一步显示,Hepa1-6 LR细胞中AKR1B10、LDHA、LDHA Y10磷酸化和AKR1B10乳酸化上调。与Huh7模型相似,EPA-仑伐替尼联合治疗在携带Hepa1-6 LR肿瘤的小鼠中引发了显著优于单药治疗的抗肿瘤反应,伴随着肿瘤重量和体积的显著更大减少。IHC再次证明联合治疗组中AKR1B10和LDHA表达显著降低。
为了进一步研究AKR1B10在LR中的作用和治疗潜力,研究人员利用了从仑伐替尼耐药的HCC患者建立的PDX模型。用EPA-仑伐替尼联合治疗的PDX模型比用载体、单用EPA或单用仑伐替尼治疗的模型长出显著更小和更轻的肿瘤。此外,携带肿瘤的小鼠接受EPA单药治疗或联合治疗并未显示任何体重减轻,而在未治疗或单用仑伐替尼的肿瘤小鼠中观察到这种效应。值得注意的是,接受单药治疗或联合治疗的小鼠未表现出肝或肾副作用。一致地,Western blot和免疫沉淀分析表明,与单药治疗相比,联合治疗显著抑制了AKR1B10乳酸化和LDHA Y10磷酸化。免疫荧光染色证实,在LR PDX肿瘤内,联合治疗组中AKR1B10和LDHA蛋白水平均下调。这些结果共同表明,EPA和仑伐替尼联合治疗在克服HCC的LR方面发挥协同作用。
由于EPA是多种醛糖还原酶的已知抑制剂,为了进一步验证靶向AKR1B10在与仑伐替尼协同治疗中的关键作用,研究人员直接采用了CRISPR/Cas9-sgRNA系统的基因敲除方法。Western blot测试证实了AKR1B10 sgRNA在Huh7和Hep3B LR细胞中的出色敲除效率。正如预期的那样,AKR1B10敲除显著增强了仑伐替尼敏感性,表现为LR细胞的IC50值降低和细胞凋亡增加。与此一致的是,在LR细胞中敲除AKR1B10降低了细胞ATP水平、葡萄糖摄取和细胞外乳酸水平,表明有氧糖酵解受到抑制。Seahorse分析进一步揭示了在LR细胞中敲除AKR1B10后ECAR降低,包括基础糖酵解和糖酵解能力。在使用Huh7 LR细胞的体内小鼠模型中,AKR1B10敲除本身表现出显著的肿瘤抑制作用,并且关键的是,与仑伐替尼协同作用,其程度与EPA联合仑伐替尼相当。敲除AKR1B10和用EPA进行药理学抑制均产生几乎相同的治疗结果——无论是作为单药治疗还是与仑伐替尼联合——这一事实提供了一条有力且趋同的证据链。

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