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本研究发现骨骼肌(SkM)细胞释放的大(lEVs)和小(sEVs)细胞外囊泡(EVs)主要通过质膜(PM)出芽形成,其鞘脂组成(尤其是S1P亚型d18:1/d16:1比例)直接调控肌肉干细胞(MuSC)分化与巨噬细胞极化。炎症因子TNF-α通过改变EVs鞘脂谱破坏其促再生功能,提示靶向EVs鞘脂组成可成为增强肌肉再生潜力的新策略。
为阐明骨骼肌(SkM)来源细胞外囊泡(EVs)在肌肉稳态调控中的作用,研究首先通过差速离心法分离出大(lEVs)和小(sEVs)两种EVs亚型。动态光散射(DLS)分析显示,10,000 g离心沉淀的lEVs粒径分布较广(50-700 nm;峰值205.15 nm),而100,000 g沉淀的sEVs粒径范围为68-396 nm(峰值159.47 nm)。Western blot和透射电镜(TEM)证实两种EVs均表达经典标志物CD63和CD81,但sEVs特异性富含TSG101和ALIX(ALG-2 interacting protein X)蛋白,与既往人源肌管研究一致。
冷冻电镜(CryoEM)显示lEVs形态异质性高且内含小囊泡,sEVs则呈均匀球形。脂质组学分析表明sEVs和lEVs均富含磷脂酰胆碱(PC)和鞘磷脂(SM),但sEVs显著富集磷脂酰丝氨酸(PS)、磷脂酰乙醇胺(PE)及胆固醇,而lEVs脂质谱更接近亲本细胞。小鼠Gastrocnemius肌肉组织来源sEVs同样呈现胆固醇富集特征,提示sEVs生物发生与质膜脂筏微域相关。
扫描电镜(SEM)首次在肌管和肌纤维表面观察到大量纳米囊泡及特殊质膜褶皱结构。免疫金标记显示CD63和CD81定位于这些褶皱区域,TEM进一步证实CD63阳性EVs直接从质膜出芽,且该过程在小鼠和人源肌管中保守存在。腺病毒介导的pHluorin/mScarlet-CD63报告系统实时捕捉到肌管质膜爆发性荧光释放事件,ExoView技术证实标记CD81阳性EVs携带CD63-pHluorin,直接证明EVs从肌管表面释放。虽然研究中观察到多囊体(MVBs)沿微管网络运输,但未发现其与质膜融合现象,表明SkM-EVs主要经由质膜途径生成。
骨骼肌再生过程中,炎症因子TNF-α是关键调节因子。转录组分析显示TNF-α处理的人源肌管中,鞘脂/磷脂代谢通路基因显著改变,包括上调SM水解酶SMPD2和鞘氨醇激酶SPHK1,下调CERK。脂质组学证实TNF-α处理后,肌管和EVs脂质谱发生重塑:sEVs与细胞脂质组成相似度提高,lEVs中溶血磷脂酰胆碱(LPC)比例显著增加,而sEVs和细胞中神经酰胺比例降低。TNF-α还诱导肌管胆固醇蓄积(与HMGCR表达上调一致),并特异性富集于sEVs而非lEVs。
TNF-α处理促进sEVs释放,与肌管表面质膜褶皱数量增加、sEVs标志物TSG101/ALIX富集度升高相关,进一步印证sEVs起源于胆固醇富集的质膜微域。
心脏毒素诱导的小鼠胫骨前肌(TA)损伤模型显示,注射对照sEVs(CTR-sEVs)显著增加>30 μm肌纤维数量及肌细胞生成素(MYOG)阳性核比例,促进再生;而TNF-α来源sEVs(TNF-sEVs)无此效应。lEVs(无论对照或TNF-α处理)均增加PAX7阳性MuSC数量但抑制其活化(Ki67阳性率降低)。
离体肌纤维培养实验排除免疫细胞干扰,直接证明sEVs促进MuSC分化(MYOG升高,PAX7降低),lEVs则抑制分化(MYOG降低,PAX7升高)。TNF-α对EVs功能的调控在体内外存在差异,提示其他肌驻留细胞(如免疫细胞)参与体内表型调控。
sEVs(无论对照或TNF-α来源)均增强巨噬细胞迁移能力,但仅CTR-sEVs诱导M1型极化标志物CD86和Il1b表达。体内实验显示lEVs处理降低M2型标志物CD206表达,延缓促炎向抗炎表型转换,而CTR-sEVs维持TNF-α表达,可能通过短暂炎症加速再生。TNF-α削弱sEVs对巨噬细胞M1极化的诱导作用。
靶向脂质组学在SkM-EVs中鉴定出两种鞘氨醇-1-磷酸(S1P)亚型:常见d18:1和非典型d16:1。sEVs中d18:1比例高于d16:1,lEVs则相反。TNF-α处理降低sEVs中d16:1比例,但不影响lEVs。
细胞实验表明高d16:1/d18:1比例上调CCN2(已知抑制MYOG表达并促进成肌细胞增殖),与lEVs处理表型一致。离体肌纤维实验证实高d18:1比例促进MuSC分化(MYOG升高),高d16:1比例则维持干细胞状态(PAX7升高)。巨噬细胞实验中,高d18:1比例促进迁移和M1极化(CD86/Il1b上调),高d16:1比例则抑制这些效应。研究表明S1P亚型比例平衡是调控肌生成和免疫应答的关键分子开关。
本研究揭示骨骼肌EVs主要经由质膜途径产生,sEVs起源于脂筏样微域,lEVs则源于主流质膜。SkM作为长寿命合胞体细胞,EVs释放可能与质膜修复机制(涉及Dysferlin/Annexins/Caveolin-3等ESCRT相关蛋白)及脂质组成调控密切相关。TNF-α通过重塑脂代谢促进胆固醇/SM富集,特异性驱动sEVs生成。
研究首次发现SkM-EVs鞘脂组成(尤其是S1P亚型比例)直接决定其生物学功能:sEVs高d18:1/d16:1比例促进MuSC分化和M1型巨噬细胞应答,加速再生;lEVs高d16:1/d18:1比例则维持Mu干细胞库并延缓炎症消退。d16:1可能通过竞争性拮抗S1PR2受体削弱d18:1信号输出。该发现为靶向EVs鞘脂组成治疗肌营养不良、衰老等MuSC耗竭性疾病提供新思路。
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