Growth of C. glutamicum with 5-OP as a sole carbon and nitrogen source 研究人员首先考察谷氨酸棒杆菌能否直接利用5-OP。结果显示,野生型ATCC 13032在改良CGXII最小培养基中,以12.9 g/L 5-OP作为唯一碳源和氮源时能够实现生长。若细胞预先在葡萄糖培养基中生长,则转接至5-OP培养基后出现明显迟滞期;若预培养阶段已接触5-OP,则迟滞期消失。该结果说明谷氨酸棒杆菌确实具备利用外源5-OP的能力,且相关代谢系统具有诱导性表达特征。
Genes required for growth of C. glutamicum on 5-OP 通过基因组检索,研究人员在谷氨酸棒杆菌中鉴定出与枯草芽孢杆菌PxpA、PxpB、PxpC同源的三个基因,命名为pxpA、pxpB和pxpC;其上游同向基因cg1142则依据后续功能被命名为pxpT。缺失pxpABC、pxpTABC或pxpT均不影响菌株在葡萄糖最小培养基中的生长,但三类缺失株均丧失了以5-OP为唯一碳氮源的生长能力。进一步的质粒回补实验显示:在ΔpxpABC中表达pxpABC可恢复并增强5-OP生长;在ΔpxpT中表达pxpT或pxpTABC可恢复生长,其中pxpTABC效果更强;在ΔpxpTABC中,只有同时表达pxpTABC才能恢复生长,而单独表达pxpT或pxpABC均无效。上述结果明确说明,PxpT介导的转运与PxpABC介导的胞内转化缺一不可,共同构成5-OP利用所必需的功能模块。
Regulation of the pxpTABC genes by PxpR 在pxpT上游,研究人员发现一个与其反向排列的GntR家族调节因子基因pxpR。通过构建ΔpxpR缺失株,研究发现pxpR缺失对葡萄糖生长无影响,却可显著缩短菌株在5-OP上的迟滞期并提高生长速率。相反,以质粒过量表达pxpR-Strep会抑制在5-OP上的生长,且在异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)诱导增强表达后抑制更明显,提示PxpR作为负调控因子发挥作用。进一步地,研究人员构建了pxpT启动子驱动venus的报告系统,在葡萄糖条件下,ΔpxpR菌株的特异荧光约为野生型的3倍,支持PxpR抑制pxpTABC转录。随后,结合RegPrecise数据库预测和实验验证,研究确定pxpR-pxpT间隔区中的17 bp反向重复序列是PxpR可能的结合位点。对该基序进行替换或删除后,报告基因表达提高约6.5倍,说明该序列对PxpR抑制作用至关重要。进一步比较不同培养条件下的报告基因表达发现:与常规CGXII培养基相比,5-OP作为唯一氮源时表达约升高2倍,而作为唯一碳氮源时约升高5.5倍,表明5-OP能够诱导pxpTABC表达。同时,葡萄糖存在时诱导程度较低,说明该操纵子除PxpR外可能还受其他转录因子影响。
PxpR functions as a biosensor for 5-OP 基于遗传学和报告实验结果,研究人员推测PxpR可能直接感知胞内5-OP。为此,研究在大肠杆菌BL21(DE3)中表达并纯化带C端Strep标签的PxpR蛋白,随后采用等温滴定量热法(ITC)检测其配体结合特性。实验表明,PxpR与5-OP发生特异性结合,KD为726 ± 23 nM,属于高亲和力结合;该过程为放热反应,ΔH为−98.7 ± 1.0 kJ mol−1,并伴随熵降低。相比之下,在相同条件下,L-谷氨酸、L-天冬氨酸、L-谷氨酰胺和L-脯氨酸均未检测到结合。该结果说明PxpR并非一般性氨基酸响应调节蛋白,而是一个针对5-OP的特异性生物传感器,其功能模型为:胞内5-OP升高后结合PxpR,进而解除其对pxpTABC的抑制。